猪小肠粘膜上皮细胞的分离及体外原代培养模型的建立

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1、营养研究《饲料工业》·2010年第31卷第1期猪小肠粘膜上皮细胞的分离及体外原代培养模型的建立职爱民左建军黄志毅邹仕庚冯定远摘要用机械刮取小肠粘膜加胶原酶Ⅱ消化的方法,采用新生未吮乳仔猪小肠组织,成功地分离了猪小肠粘膜上皮细胞(Intestinalepithelialcells,IEC)且在体外培养传代,并采用碱性磷酸酶和角蛋白免疫学试验鉴定,结果表明:体外培养的猪IEC在

2、DMEM-F12培养基中,细胞在1~2d贴壁,5~6d形成细胞克隆,9~11d融合成片;碱性磷酸酶和生物素标记的细胞角蛋白抗体鉴定结果显示90%培养的细胞为阳性,分别从生化的角度证明和细胞生物学角度鉴定了所培养的细胞为IEC。关键词猪;小肠粘膜细胞;原代培养中图分类号S828肠粘膜上皮细胞(Intestinalepithelialcells,IEC)是省原种猪场。肠道的重要功能细胞,参与肠道食糜的消化、吸收、免1.2主要仪器设备与试剂疫屏障和应激反应等,并与肠道的内、外分泌功能关NU-2500型CO2细胞培养箱(N

3、uaire公司,美国);系十分密切。长期以来,在研究IEC的生物学功能、细IX70型倒置生物显微镜(Olympus公司,日本);5804R胞增殖和分化的调控因素,物质吸收与代谢等多采用型高速大容量冷冻离心机(Eppendorf公司,德国);SW-[1]肠道肿瘤细胞系为试验模型。然而癌细胞是非正常CJ-1F型超净工作台(苏州净化,中国);HVE-50型高的细胞,其生理特征明显不同于正常细胞,单纯由癌压蒸汽灭菌锅(HIRAYAMA公司,日本);GF-M2000型细胞系的研究结果来解释正常细胞的行为,明显有其酶标仪(山东

4、高密彩虹仪器公司);CS101-2AB型鼓风不足。原代培养是从供体取得组织细胞后在体外进行干燥箱(重庆试验设备厂);79-1型磁力加热搅拌器(江的首次培养,原代培养的细胞生物学特性变化较少,苏金坛荣华仪器总厂);Orion420A+型酸度计(Thermo最能反映和接近体内生长特性,是一种良好的试验载Electron公司,美国);DMEM培养基、胎牛血清、胰酶[2]体。国外早在1993年就有猪肠细胞原代培养的报道,和胶原酶Ⅱ型(Gibico公司),标准胎牛血清(杭州四季[3-5]其它类型的猪组织细胞原代培养的报道也不

5、少,国青公司),青霉素、链霉素、β-甘油磷酸钠、硝酸钴、硫内关于动物体细胞原代培养的报道多集中在其它动化铵(Sigma公司),NaCl、KCl、NaH2PO4·12H2O,K2HPO4、[6-9]物身上,而关于猪IEC原代培养的方法一直属于空丙酮、硝酸钙、硫酸镁等试剂均为国产、分析纯。白。本试验的目的就是通过机械和酶消化结合的方法2试验方法建立猪IEC原代培养的系统,为猪肠道营养的研究提2.1猪IEC的分离培养供新的试验材料。2.1.1主要试剂配制1试验材料按照说明书配制DMEM-F12不完全培养基,1.1试验动物

6、0.22μm过滤除菌,分装,4℃避光保存备用。1gⅡ型新生杜×长×大三元杂交仔猪(未吮奶),购于广东胶原酶干粉溶于100ml上述配好的DMEM-F12不完全培养液,0.22μm微孔滤膜过滤除菌,1.5mlEppen-dorf管以1ml/管分装,-20℃保存备用。DMEM-F12完全培养基为DMEM-F12不完全培养基加10%的胎职爱民,河南省农业科学院农业部动物免疫学重点开放实验室,博士,副研究员,450002,河南省郑州市农业路1号。牛血清。左建军、黄志毅、邹仕庚、冯定远(通讯作者),华南农业大2.1.2猪IEC

7、的分离[10-11]学动物科学学院。参照文献报道的方法并根据实际情况调整,收稿日期:2009-10-26具体如下:将刚出生未吮乳的仔猪颈动脉放血处死,★国家重点基础研究发展计划项目(2004CB117501)、广东联合75%的酒精擦洗消毒后,置于超净工作台。无菌条件基金项目(No.u0731004)和博士点基金项目(20070564014)下打开腹腔,整体分离肠道,迅速投入盛有15ml37℃资助预热DMEM-F12不完全培养基的平皿中;分别取十10职爱民等:猪小肠粘膜上皮细胞的分离及体外原代培养模型的建立营养研究二

8、指肠、回肠和空场各15cm左右,沿纵向剪开,培养PBS洗细胞2min×3次;吸去多余的PBST,加50μl封基冲洗三遍并用玻片轻轻刮去表面杂物;清洗后的培闭液于孔中,37℃孵育10min;吸干液体,并用PBST养基转移到新的盛有15ml37℃预热DMEM-F12不洗2min×3次;每孔细胞加100μl的一抗(鼠抗人角完全培养基的平皿中,取出小肠,DMEM-F

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