福林酚法测蛋白

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时间:2019-05-28

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1、福林-酚法的原理该方法是双缩脲法的发展,包括两步反应: (1)在碱性条件下,蛋白质与铜作用生成蛋白质—铜络合物。 (2)此络合物将试剂磷钼酸—磷钨酸(FolIn试剂)还原,混合物深蓝色(磷钼蓝和磷钨蓝混合物),颜色深浅与蛋白质含量成正比。此方法操作简便,灵敏度比双缩脲法高100倍,定量范围为5~100μg蛋白质。FolIn试剂显色反应由酪氨酸、色氨酸、半胱氨酸引起,因此样品中若含有酚类、柠檬酸和巯基化合物,均有干扰作用。此方法的缺点是有蛋白质的特异性影响,即不同蛋白质因络氨酸、色氨酸含量的不同而使显色强度稍有不同,标准曲线也不是严格的直线形式。 【仪器与用具】 试管若干;

2、刻度移液管05Ml1支,1Ml1支,10Ml1支;定量加样器;圆底烧瓶;冷凝管1套(带橡胶管);微量滴定管;小烧杯;微量进样器50μl1支;721分光光度计;恒温水浴器;研钵;玻棒;离心机;离心管。 【试剂】 NA2WO4·2H2O;NA2MoO4·2H2O;85%H3PO4;浓HCl;LI2SO4·H2O;溴水;酚酞指示剂;NA2CO3;NAOH;CuSO4·5H2O;酒石酸钾钠;牛血清白蛋白。所用试剂均为化学纯或分析纯。 【方法】 1试剂的配制 (1)碱性铜试剂(相当于双缩脲试剂)的制备首先配制A液:4%碳酸钠(NA2CO3)溶液与0.2Mol/L氢氧化钠(NAO

3、H)溶液等比例混合(2%NA2CO3,01MolNAOH);B液:1%硫酸铜(CuSO4·5H2O)溶液与2%酒石酸钾钠溶液等比例混合(0.5%CuSO4·5H2O,0.1%酒石酸钾钠)。在使用前将A液与B液按50∶1的比例混合即成。此为FolIn—酚试剂甲液,此试剂只能使用1天。 酚试剂(相当于FolIn试剂)的配备:称取钨酸钠(NA2WO4·2H2O)100g、钼酸钠(NA2MoO4·2H2O)25g,加蒸馏水700Ml溶解于1500Ml的圆底烧瓶中。之后加入85%的H3PO450Ml,浓HCl100Ml,安上回流装置(使用磨口接头,若用软木塞或橡皮塞时,就必须用锡

4、铂纸包起来),使其慢慢沸腾10H。冷却后加入硫酸锂(LI2SO4·H2O)150g,水50Ml,溴水2~3滴,不用回流装置开口煮沸15Min,以释放出过量的溴。待冷却后稀释至1000Ml,并过滤入棕色瓶中,密闭于冰箱中保存(冷却后溶液呈黄色,倘若仍呈绿色,须再滴加数滴液体溴,继续煮沸15Min)。使用时用标准NAOH溶液滴定,以酚酞作为指示剂,滴定终点由蓝变灰,滴定后算出酸的浓度。使用时大约加水1倍,使最终浓度相当于1Mol/LH+酸,此为FolIn-酚试剂乙液(FolIn试剂)。 在测定时要注意,因为酚试剂仅在酸性条件下稳定,但此实验的反应只在PH值为10的情况下发生,

5、所以当加酚试剂时,必须立即混匀,以便在磷钼酸—磷钨酸试剂被破坏前即能发生还原反应,否则会使显色程度减弱。 (2)标准蛋白质溶液的配制称取25mg牛血清白蛋白,溶于100Ml蒸馏水中,使最终浓度为250μg/Ml。 2标准曲线的绘制 (1)取7支试管,编号后,分别加入0ml、0.1ml、0.2ml、0.4ml、0.6ml、0.8ml、1.0ml标准蛋白质溶液,用蒸馏水补足1Ml,使每管含蛋白量分别为0μg、25μg、50μg、100μg、150μg、200μg、250μg(必要时可做重复)。 (2)在每支试管中用定量加样器加入5Ml甲液,混匀,于30℃下放置10Min。 

6、(3)在每支试管中喷射加入0.5Ml乙液,立即振荡混匀,在30℃下保温30Min。 (4)准确到30Min后,以不加标准蛋白试管中的溶液为空白,在500nM下用1CM光径的比色杯对系列标准蛋白溶液进行比色,测定光密度值。 以蛋白浓度为横坐标,光密度值为纵坐标,绘制标准曲线。 3样品的测定 (1)样品的提取:称取鲜样05g,用5Ml蒸馏水或缓冲液研磨提取。 取10Ml(视蛋白质含量适当稀释)样液加入试管中,然后重复步骤2的(2)、(3)、(4),以标准曲线中的0管为空白,测定吸光值。 (2)根据吸光值查标准曲线,求出比色液中的蛋白质含量。 4结果计算 样品中蛋白的含

7、量(Mg/g)=C×VTV1×FW×1000(2-1) 式中C:查标准曲线值(μg); VT:提取液总体积(Ml); FW:样品鲜重(g); V1:测定时加样量(Ml)。 【注意】 还原物质,其他酚类物质及柠檬酸对此反应有干扰。http://www.cqxykgs.com/http://www.cdxyktxyh.com/http://a616141064.qqamq.com/http://www.tt0994.com/news/newsshow-151055.htmlPfYJJir22M60

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