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时间:2019-02-25
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1、实验六PCR产物的TA克隆(DNA的胶回收和连接)【实验目的】1.掌握DNA回收和连接的基本原理。2.学习和掌握PCR产物的T-vector克隆。【实验原理】1.DNA片段回收方法:DNA片段在适当浓度的琼脂糖凝胶中,通上一定电压进行电泳,不同大小的DNA分子由于迁移率的不同而分离开。切下带有所需DNA片段的凝胶,用冻融法、玻璃奶回收法或商品化胶回收试剂盒将目的片段回收纯化。2.利用Taq酶能够在PCR产物的3’末端加上一个非模板依赖的A,而T载体是一种带有3’T突出端的载体,在连接酶作用下,可以把PCR产物插入
2、到质粒载体的多克隆位点,可用于PCR产物的克隆和测序。商品化的T载体有很多。本实验采用TaKaRa公司的pMDTM18-TSimpleVector。这个载体以pUC19载体为基础,消除了pUC18载体上的多克隆酶切位点,经EcoRⅤ酶切后在两侧的3'端添上“T”制备而成(见附录1)。由于本载体上消除了多克隆酶切位点,克隆后的PCR产物将无法使用载体上的限制酶切下,需要在PCR扩增引物上导入合适的酶切位点。【试剂与器材】(一)试剂1.pMDTM18-TSimpleVectorKit(Takara公司)。2.TAE电
3、泳缓冲液3.琼脂糖(Agarose)4.6×电泳加样缓冲液:0.25%溴粉蓝,40%(w/v)蔗糖水溶液,贮存于4℃。5.溴化乙锭(EB)溶液母液:配制成10mg/mL,用铝箔或黑纸包裹容器,储于室温即可。6.70%乙醇7.胶回收试剂盒(Omega公司)(二)器材水平式电泳装置,电泳仪,台式高速离心机,恒温水浴锅,微量移液枪,微波炉或电炉,紫外透射仪,凝胶成像系统或其它照相设备。【操作方法】(一)胶回收试剂盒回收PCR产物(以Omega公司GelExtractionKit为例)1.当目的片段DNA完全分离时,转移
4、凝胶至紫外灯上尽可能快地切下目的片段。2.凝胶块转移至1.5ml离心管(离心管已经称重了)中,称重得出凝胶块的重量。近似地确定其体积(假设其密度为1g/ml)。加入等体积的BindingBuffer(XP2),于55-65℃水浴中温浴7min或至凝胶完全融化,每2-3min振荡混合物。(在凝胶完全溶解之后,注意凝胶-Bindingbuffer混和物的pH值。如果其pH值大于8的话,DNA的产量将大大减少。如果是橙色或红色,则要加入5μl浓度为5M,pH为5.2的醋酸钠,以调低其pH值。该混合物的颜色将恢复为正常的
5、浅黄色。)3.取一个干净的HiBindDNAMini柱子装在一个干凈的2ml收集管内(已备好)。4.将第三步获得的DNA/熔胶液全部转移至柱子中。室温下10,000xg离心1分钟。弃收集管中的滤液,将柱子套回2ml收集管内收集管。5.如果DNA/凝胶熔液的体积超过700ul,一次只能转移700ul至柱子中,余下的可继续重复第5步至4/4所有的溶液都经过柱子。每一个HibindDNA回收纯化柱都有一个极限为25μgDNA的吸附能力。如果预期产量较大,则把样品分别加到合适数目的柱子中。6.弃收集管中的滤液,将柱子套回
6、2ml收集管内收集管。转移300μlBindingBuffer(XP2)至柱子中,室温下,10,000xg下离心1min。7.弃收集管中的滤液,将柱子套回2ml收集管内收集管。转移700μlSPWWashbuffer(已用无水乙醇稀释的)至柱子中。室温下10,000xg离心1min。(浓缩的SPWWashBuffer在使用之前必须按标签的提示用乙醇稀释。如果DNA洗涤缓冲液在使用之前是置于冰箱中的,须将其拿出置于室温下)。8.重复用700μlSPWWashbuffer洗涤柱子。室温下10,000xg离心1min。
7、9.弃收集管中的滤液,将柱子套回2ml收集管内收集管。室温下,13,000xg离心2min以甩干柱子基质残余的液体。10.把柱子装在一个干凈的1.5ml离心管上,加入15~30μl(具体取决于预期的终产物浓度)的ElutionBuffer(或TE缓冲液)到柱基质上,室温放置1min,13,000xg离心1min以洗脱DNA。第一次洗脱可以洗出70-80%的结合DNA。如果再洗脱一次的话,可以把残余的DNA洗脱出来,不过那样的浓度就会较低。(二)连接反应(以Takara公司pMDTM18-TSimpleVector
8、Kit为例)1)在微量离心管中配制下列DNA溶液,全量为5μl。 pMDTM18-TSimpleVector 1μl InsertDNA 0.1pmol~0.3pmol dH2O
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