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1、跳骨片不同极性部位对软骨细胞活性影响探究【摘要】目的:研究跳骨片不同极性部位对软骨细胞活性的影响。方法:用跳骨片的水提物、醇提物、多糖以及醇提物的石油瞇、氯仿、乙酸乙酯、正丁醇萃取物及残留的水相共8个组分干预体外培养的软骨细胞,采用MTT法检测不同极性部位作用48h后软骨细胞的活性。结果:在一定剂量范围内,跳骨片的水提物、多糖,醇提物的乙酸乙酯萃取部位和水相干预组软骨细胞的活性增强,醇提物以及醇提物的石油瞇、氯仿和正丁醇萃取部位干预组软骨细胞的活性降低。结论:跳骨片的水提物、多糖和醇提物的乙酸乙酯萃取及残留的水相部位能够促进软骨细胞的增殖,为跳骨
2、片的有效部位。【关键词】软骨细胞;跳骨片;极性部位关节的正常自由活动由关节软骨的完整性维持,软骨细胞作为存在于关节软骨的惟一细胞,在维持关节软骨基本组成物细胞外基质的合成和分解代谢平衡上起着中心调控的作用,因而,软骨细胞的功能稳定性对于关节的正常活动有着重要的作用,通过促进软骨细胞的增殖加强软骨细胞的功能是临床上治疗骨科相关疾病的一种手段[1,2]。跳骨片由福州屏山制药厂生产,是由黄英、骨碎补、血蝎、土鳖虫等20味中药制成的糖衣片,具有消肿定痛、活血舒筋、促进骨痂生长的功效,主要用于骨折、脱臼和新久伤痛的治疗,且临床疗效较好。目前,有关跳骨片的报
3、道多集中在质量控制上[3,4],关于其药理活性及相关作用机制的研究甚少,本文对跳骨片不同极性部位对软骨细胞活性的影响进行了初步研究,旨在为跳骨片的进一步开发利用提供前期实验基础。1材料和仪器1.1主要试剂和仪器胎牛血清(FBS)、DMEM/L0W培养基、PBS缓冲液、胰蛋白酶(美国Hyclone公司),MTT、II型胶酶(美国Sigma公司),二甲基亚枫(DMSO)(Biosharp公司),二氧化碳培养箱(HF212UV,HealForce),超净工作台(SW-CJ-1D,苏州净化),倒置式系统显微镜(1X70,OLYMPUS公司),酶标仪(EC
4、X-800,BI0-tek)o1.2实验动物体重75〜90g的4周龄清洁级雄性SD大鼠4只,由福建医科大学动物中心提供。2实验方法2.1软骨细胞的培养及鉴定2.1.1软骨细胞的分离和原代培养SD大鼠脱颈处死,剥离双膝并剪断,与75%的酒精中浸泡消毒15min后,在超净台内打开关节腔,分离关节面并切取软骨,PBS洗3次后将其切成1mm3的小块儿,PBS冲洗3次后转移至盛有5ml0.2%II型胶酶的培养皿中,在37°C,5%CO2的培养条件下消化,每1.5h取上清离心收集细胞,将细胞重悬于10%FBS完全培养,按一定密度接种于培养瓶,于培养箱内培养,
5、重复4次至组织块近消化完全,每2天换液1次。2.1.2软骨细胞的传代培养倒置显微镜观察培养瓶中细胞铺满瓶底80%〜90%时,弃去培养基,PBS洗去残留的培养基后,加入胰酶0.5ml,于培养箱内作用2min后镜下观察,细胞变圆,个别细胞开始浮游,立即加入新的培养基,小心吹打混匀,接种于新的培养瓶培养。2.1.3软骨细胞的免疫组化鉴定第2代软骨细胞爬48h后,PBS冲洗,4%多聚甲醛固定30min,PBS洗后0.3%TRIX-100破膜15min,PBS洗后3%H2O2作用20min后,按照免疫组化试剂盒说明书操作,阴性对照组不加CollagenII
6、抗体,封片,镜下观察。2.2跳骨片不同极性部位的制备2.2.1水提物的制备跳骨片去糖衣,称取研碎后的粉末10.4g,加20倍体积的蒸馆水,1001下回流提取3次,每次3h,抽滤,合并滤液并减压浓缩至100ml,取50ml水浴蒸干成浸膏备用。2.2.2多糖的制备取2.2.1项下的水提浓缩液50ml,加入无水乙醇至含醇量达80%,静置离心分离沉淀,沉淀物加少量蒸馆水溶解后,重复操作2次,水浴蒸干即为粗多糖。2.2.3醇提物的制备称取粉碎的去糖衣后的跳骨片15.3g,加入10倍体积的60%乙醇于60I下回流提取2h,提取3次,抽滤,合并滤液并减压浓缩至
7、150ml,取50ml水浴蒸干备用。2.2.4醇提物不同极性部位的制备取2.2.3项下剩余浓缩液100ml,依次加入石油瞇、氯仿、正丁醇、乙酸乙酯进行萃取,萃取液及最后的水相减压浓缩蒸干得各萃取部位的浸膏。2.2.5不同极性部位溶液的配置称取一定量的跳骨片醇提物和醇提取物的石油瞇、氯仿、正丁醇、乙酸乙酯萃取物浸膏适量,加入DMS0配成100mg・mlT的母液,水提物、多糖及水相用5%FBS配成10mg•ml-1母液,所有的母液均用0.211m的微膜过滤,滤液4工保存,使用时用5%FBS稀释。2.3MTT法检测跳骨片不同极性部位作用后软骨细胞的细胞
8、活性将第2代软骨细胞按1X104•ml-1的密度加入96孔板,100111每孔,培养24h后加入不同极性部位、不同含药浓度的5%FBS培