大鼠颈静脉长期留管术的改进

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1、大鼠颈静脉长期留管术的改进摘要：目的建立有效可靠的大鼠长期静脉输液通路。方法用血管夹夹闭游离好的血管，预先置入探针，在其引导下，将硬膜外导管置入大鼠颈静脉。结果90％的实验大鼠能顺利置管，70%能完成为期10d天非连续输液，部分可超过20d，动物均能良好耐受，30只实验大鼠1只麻醉死亡，术后5只导管脱出，3只堵管，无1例发生感染。结论本文所建立的大鼠静脉输液通路手术死亡率、感染率和导管脱落率较低，实用、有效、可靠。关键词：大鼠；颈静脉Aimprovedtechniqueforlong-termvascularaccessinRatsAbstractObjectiveTo

2、establishaavailable,economicandreliableanimalmodeloflong—termintravenousaccessinrats.MethodsPlacethespinalcatheterenteringtherightjugularveinwiththehelpofprobe，beforetherightjugularveinwassqueezed.Results70%experimentratscanaccomplishinfusiondemandswithoutobviousdiscomfort.Oneratdiedfrom

3、anesthesiaandnooneoccurredinfection.ConclusionTheimprovedtechniqueisverymortality,infectionandexpulsionrateareverylow,thismethodissimple,effectiveandreliable。大鼠为常用的实验动物，以其为实验动物时，许多研究均需通过静脉持续给药、输液。鼠尾静脉便于穿刺，但是易摆动，穿刺针不易固定，且仅适于单次给药，不能用于持续给药、输液。理想的持续给药、输液途径为颈静脉置管。目前，尚无统一的置管和固定方式，且采用的导管等材料价格昂贵

4、。本文采用价廉、易得的材料,对大鼠颈静脉置管、固定进行改进,建立一可靠、相对经济的实验大鼠静脉通路。一　材料与方法1.动物清洁级雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠3O只，3月龄，体重200～250g，由南方医科大学动物实验室提供。2.材料外径0.9mm的硅塑管(硬膜外导管,F3*70B型,常州市乐佳医疗器械有限公司)、硬膜外穿刺针，注射器、普通肝素帽、硬膜外导管接头，肝素盐水，探针，两个血管夹3.术前准备　剪一段长约20cm的硬膜外导管（保留带有侧孔头端），导管尾端与其相应的接头连接,接头再与注射器相连，并充满肝素盐水。4.方法4.1分离静脉与置管10%水合氯

5、醛（0.35mL/100g）腹腔内注射麻醉,将麻醉好的SD大鼠固定在实验台上，备皮、消毒,于颈中线偏右侧做一约1.5cm纵切口,剪开皮下组织,显露右颈静脉，2%利多卡因3～5滴浸润1min，完全游离长约1～1.5cm血管，用血管夹分别夹闭其近心端和远心端，血管下穿过两根1号线。在游离颈静脉的中间部位，用镊子提起血管壁，全层剪一“V”形小口，约占静脉周长的1／3。预先置入探针，再将硬膜外导管沿切口缓慢送入颈静脉；轻轻放开近心端血管夹，将导管置入2.5～3cm，可见有血回流或回抽有血。1号线结扎固定导管，松紧适宜，再次回抽，确定导管在血管内，结扎血管的远心端，放开远端血管夹

6、。将导管连同附近的少许肌肉缝合固定2～3针，连续缝合伤口，剩余0.5cm，便于导管穿过颈部固定在颈部背侧。4.2导管固定将大鼠翻身置于实验台上，颈后部备皮、消毒，剪一小口，用硬膜外穿刺针沿皮下穿至颈部切口处，拔出针芯，将硬膜外导管置入穿刺针中，在其引导下，从颈背部穿出，皮肤外留约2cm，连接接头，回抽，确定无误后，将充满肝素盐水的硬膜外导管接头和肝素帽接好，在颈背部用7号线缝合3～4针固定。缝合剩余切口，并用75%酒精消毒。5.术后维护将大鼠放入单笼喂养，保温至其苏醒。导管固定后，即刻经肝素帽注入5万单位青霉素，每天1次,时间为1周,且每次推注0.5ml肝素盐水（25U

7、/ml）封管，可保持管道通畅、防止术后感染和血液凝固堵塞血管。二结果30只实验大鼠1只麻醉死亡，置管过程中10只在探针帮助下完成，其余均能顺利置管。术后5只导管脱出（1只咬断导管，4只在7d后咬坏肝素帽或接头），3只堵管，无1例发生感染，其余22只均能完10d非连续输液，部分可达20d。解剖可见手术侧有大量新生血管，硬膜外导管与周围组织粘连。导管置入2.5～3cm，多接近右心房口，少数置入右心房，其中一例置入下腔静脉；左侧颈外静脉增粗变硬。三讨论大鼠对饲养条件要求简单、成本低、可做大批量实验动物模型，为医学实验中最常用的动物。清醒状态下，