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时间:2018-08-31
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1、慢病毒转染人骨髓间质干细胞研究【摘要】目的:分离培养人骨髓来源间质干细胞(mesenchymalstemcells,MSCs)并进行慢病毒载体介导的基因转染研究。方法:采取全骨髓贴壁培养法分离培养人骨髓MSCs。利用脂质体法进行慢病毒感染人骨髓MSCs。结果:分离培养出人骨髓来源的MSCs,并用携带绿色荧光蛋白(EGFP)报告基因的慢病毒成功感染人骨髓MSCs。结论:获得人骨髓MSCs并进行慢病毒载体介导的基因修饰,为间质干细胞基因工程和组织工程研究奠定了基础。【关键词】间质干细胞;慢病毒;转染 [Abstract]Objectiv
2、e:Toisolateandculturemesenchymalstemcells(MSCs)derivedfromhumanbonemarrowandtransfectthecellsbylentiviralvectors.Methods:ThetissueadherentculturemethodwasusedtoisolateMSCsfromhumanbonemarrow.TheMSCsweretransfectedbylentiviralvectorsusinglipofectamine2000.Results:Humanbo
3、nemarrowMSCsweresuccessfullyisolatedandefficientlytransfectedbyEGFP-expressinglentiviralvectors.Conclusion:HumanbonemarrowMSCshavebeentransfectedbylentivirus,whichwillplayaroleinresearchingonthefunctionofMSCsingeneandtissueengineering. [Keywords]mesenchymalstemcells;le
4、ntiviralvector;transfection 间质干细胞(mesenchymalstemcells,MSCs)存在于多种组织,主要包括骨髓、脂肪组织、骨骼肌、肝脏、脐血及外周血等,骨髓是最常用的MSCs体外分离培养的组织来源。MSCs增殖能力强,体内外均具有多向分化潜能,基因修饰后保持原有多潜能性的同时可持续稳定表达外源基因;体外转染和培养一段时间移植至体内仍可存活,并能够迁移至病变部位,因而其成为基因治疗研究领域令人关注的靶细胞[1]。因此,本研究从人骨髓组织中分离培养出MSCs并体外扩增用于慢病毒转染,为进一步利用MS
5、Cs进行基因治疗奠定基础。 1材料与方法 1.1标本和主要试剂 成人骨髓(江苏大学附属医院),慢病毒三质粒系统FUGW,pCMVR-delta8.9和VSVG(上海医学遗传所惠赠),人胚肾293T(本实验室保存),胎牛血清和L-DMEM(Gibco公司),胰蛋白酶(Sigma公司),lipofectamine2000转染试剂盒(Invitrogen公司),Polybrene(Sigma公司),Trizol试剂(Invitrogen公司),RT-PCR试剂盒(Toyobo公司),PCR试剂(Takara公司),质粒提取试剂盒(Ax
6、ygen公司),限制性内切酶BamHⅠ和EcoRⅠ(NEB公司)。引物设计采用primerpremier5.0软件,由上海生物工程有限公司合成。6 1.2主要仪器 二氧化碳培养箱(Forma公司),BeckmanSW28Rotor超速离心机(Beckman公司),PCR仪(ThermoHybaid公司),流式细胞仪(FACSCalibur,BD公司),倒置式生物显微镜(TE300,Nikon公司),细胞培养瓶和培养皿(Corning公司)。 1.3方法 1.3.1人骨髓MSCs的分离扩增根据本室建立的方法分离培养人骨髓MSCs
7、[2]。主要操作如下:新鲜分离的骨髓液5ml加入含青霉素和链霉素的磷酸盐缓冲液中,用吸管吹打混匀后,800r/min离心10min去除含脂滴上清。细胞沉淀种在含10%胎牛血清的L-DMEM营养液中,37℃、5%CO2饱和湿度培养。5d后半量换液,第7~10天后见有较多贴壁细胞后全量换液,此后每3天换液1次。细胞80%左右融合时,用含0.1mmolEDTA-Na2的0.25%胰酶室温消化,细胞沉淀按1∶3比例传代。待其生长接近融合层时,即得到人骨髓来源的MSCs。 1.3.2人骨髓MSCs表面标志检测取1×105第3代人骨髓MSCs与
8、FITC或PE标记的鼠抗人CD13,CD29,CD44,CD105,CD31,CD34,HLA-Ⅰ及HLA-DR在4℃作用30min后,经流式细胞仪检测。阴性对照为FITC结合的鼠IgG1和PE结合的鼠IgG1。 1.
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