毕赤酵母的摇瓶发酵方法

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1、毕赤酵母的摇瓶发酵方法：一、摇瓶发酵方法:毕赤酵母摇瓶发酵方法分为两个阶段，1、酵母菌株生长阶段；2、脂肪酶诱导表达阶段。1、酵母生长阶段。准备试剂：1000mlBMGY培养基，1000mlBMMY培养基，10X的甲醇，摇瓶1L（灭菌），温控摇床，50ml离心管（灭菌）。紫外分光光度计，石英比色皿。以下所有操作均在超净台内或者无菌条件下完成。（1）往灭好菌的IL摇瓶中加入100mlBMGY培养基，然后加入约1ml脂肪酶菌株（培养基：菌液=100：1），用透气膜封口（透气，但是细菌不能透过）。置于温控摇床上，温度调至300C，转速为250-300rpm/min，使

2、酵母生长，OD600=2.0-6.0，时间约为15-24小时。（2）将发酵液转入50ml离心管，1500g-3000g离心5min。去掉上清，用BMMY培养基将菌体浓度稀释至OD600=1.0，约有500ml左右。将稀释后的发酵液分别加入到1L的药瓶中，每个摇瓶150ml发酵液（绝不能超过200ml）。（3）将摇瓶置于温控摇床上，温度调至300C，转速为250-300rpm/min，使酵母表达脂肪酶，每24小时加入一次5%的甲醇，使甲醇的终浓度为0.5%。连续诱导表达48小时。（4）将发酵液进行12000rpm/min离心5min，取上清（若上清仍混浊，可反复离

3、心）；进行酶活分析和蛋白含量分析。BMGY培养基的配制（1000ml）：20g蛋白胨（peptone）,10g酵母提取物（YeastExtract）,加水至700ml；1210C高温灭菌20min。然后分别在无菌条件下加入10XYNB100ml，10X磷酸钾缓冲液（PH6.0）100ml，10X甘油100ml。BMMY培养基的配制方法（1000ml）：20g蛋白胨（peptone）,10g酵母提取物,加水至700ml；1210C高温灭菌20min。然后分别在无菌条件下加入10XYNB100ml，10X磷酸钾缓冲液（PH6.0）100ml，10X甲醇100ml。1

4、0X的甲醇的配制：取甲醇（AR上海医药集团有限公司）5ml，加入无菌水95ml，配置成5%的甲醇溶液，用0.22μM的微孔滤膜（millipore公司）过滤除菌，该溶液在常温下的保质期为两个月。10X的YNB配制方法(1000ml)：称取YNB（生化试剂，上海生物工程公司，不含硫酸铵）34g,加入100g硫酸铵，待完全溶解后，用0.22μM的微孔滤膜（millipore公司）过滤除菌。该溶液在常温下的保质期可以达1年。10X的磷酸缓冲液的配制方法：分别配制1M的K2HPO4和KH2PO4，然后将132ml的K2HPO4和868ml的KH2PO4混合，调节PH至6

5、.0；调PH用磷酸或者KOH，然后1210C高温灭菌20min。该溶液在常温下的保质期可以达1年以上。10X的甘油的配制方法（1000ml）：取100ml的甘油加水至1000ml，然后1210C高温灭菌20min。该溶液在常温下的保质期可以达1年以上。5．问：在下是初学者，关于毕赤酵母的诱导表达有些问题：+E*v1H  }0A$F3s+X    “每24h向培养基中添加100％甲醇至终浓度为0.5～1.0%”这里的甲醇浓度如何控制？4_/z"L!e:j/F4n:}    还有，关于BMMY的甲醇浓度有些材料里的是0.5%，有的是1.0%，应该是哪个？“每24h向

6、培养基中添加100％甲醇至终浓度为0.5～1.0%”这里的甲醇浓度和BMMY中的甲醇浓度是要一致的吗？${7J*E3L%b9?/u    另外一个小问题，配10%甘油时，移入量筒的100%甘油一部分会粘在管壁上，难免最后配成的10%甘油会有所偏差，这样要不要紧？操作上是否有问题？+c*h5@5I)]%P"j    参考见解1：,k4N"s*v!x1J:~    “每24h向培养基中添加100％甲醇至终浓度为0.5～1.0%”#%W#B*i3v    我可以给你解释一下：#q,b'k!c4i0V;h5o*U"F    1、它的意思是每隔24小时，不断的添加纯甲醇

7、（指的是甲醇试剂含有100％甲醇，不含有其他的成分）至终浓度为0.5～1.0%，指的是添加的甲醇占总体积的0.5～1.0%（即每100升培养基含有甲醇0.5～1.0升，如果是质量体积比则是每100毫升培养基含有甲醇0.5～1.0克）$M;f0d&]+I,`'R%J4p    2、只要你添加的量在以上的这个范围就可以，当然可以根据实验的实际情况进行调整，但是一般要在此范围内。&m9~5k&c&b*@8w    3、配10%甘油时，注意先加入部分水后在称取甘油加入，然后在定容到所需要的体积，这样就可以避免甘油粘在管壁上，甘油易溶于水，配好后，再粘在管壁上就不会影响了

8、。!O._(q(G*o1