抵抗素基因转染诱导肝性胰岛素抵抗细胞的鉴定论文

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1、抵抗素基因转染诱导肝性胰岛素抵抗细胞的鉴定论文【摘要】目的将编码人抵抗素基因的pcDNA3.1(+)真核表达载体在HepG2肝癌细胞中进行稳定转染，以建立抵抗素诱导的肝性胰岛素抵抗细胞模型。方法实验分3组：HepG2细胞组;空质粒组;抵抗素基因转染组，通过免疫细胞化学和RTPCR方法进行抵抗素基因和蛋白表达鉴定，用微量化的葡萄糖氧化酶法检测细胞对葡萄糖的摄取作用。结果免疫细胞化学染色结果表明：与对照组比较，抵抗素基因转染组抵抗素蛋白平均光密度值显著升高(P0.01);而空质粒组无显著差异(P0.05)。RTPCR扩增产物

2、电泳表明：抵抗素基因转染组有目的条带出现，而对照组和空质粒组无目的条带出现，细胞葡萄糖摄取实验表明：抵抗素基因转染细胞对葡萄糖摄取作用下降。结论过度表达人抵抗素基因的胰岛素抵抗的肝细胞建模成功。【关键词】抵抗素;基因转染;HepG2细胞;胰岛素抵抗2型糖尿病的发病机制主要与胰岛素抵抗有关，抵抗素在啮齿类由脂肪细胞产生并可诱导其产生胰岛素抵抗.freela公司);免疫细胞化学染色试剂盒(福州迈新公司);Trizol(天津TBD公司);G418(北京鼎国生物技术公司)。1.1.3主要仪器9700PCR扩增仪(美国PE公司Gene

3、AmpPCRSystem);GIS2008凝胶图像分析系统(上海培清科技公司)，HPIAS1000高清晰度彩色图文分析系统(同济医科大学千屏影像公司);低温高速离心机(日本Hitachi公司)。1.2方法1.2.1细胞培养、转染和筛选①将对数生长期的HepG2细胞在转染前1天接种在24孔板中，使其在转染日生长融合达60%～70%，并换不含双抗的DMEM高糖培养液。②转染当日先把原培养液弃去，用不含血清和双抗的培养液1ml冲洗细胞两次，再每孔加400μl的不含血清和双抗的DMEM高糖培养液。③转染按试剂盒说明书进行:共准备

4、9孔，分成三组：对照组：只加正常培养液;空质粒组：转染未连接抵抗素基因的pcDNA3.1(+)质粒;抵抗素基因转染组：转染连接人抵抗素基因的pcDNA3.1(+)抵抗素基因真核表达载体。④转染后4h吸去转染复合物，每孔加600μl的正常培养液，转染后72h开始加800μg/ml浓度的G418(新霉素)进行筛选，培养。约2RNA①细胞总RNA提取：按Trizol一步法提取总RNA：②引物设计：依据引物设计原则，参照Genbank上抵抗素基因mRNA序列，用Primer5软件进行引物设计。抵抗素上游引物：5′GTAAAGCTC

5、TCTGTCTCCTC3′;下游引物：5′GGAATGCTGCTTATTGCCCT3′，扩增片段长度137bp。内参βactin上游引物：5′CTACAATGAGCTGCGTGTGGC3′;下游引物：5′CAGGTCCAGACGCAGGATGGC3′;扩增片段长度270bp。引物提交上海生物工程技术有限公司合成。③RTPCR反应体系：按试剂盒说明将样品及试剂加入反应管内。④RTPCR反应条件：40℃，30min，94℃，2min;94℃，30s，55℃，45s，72℃，30s，30个循环，72℃，5min

6、。PCR产物用1.5%浓度的琼脂糖凝胶电泳，用GIS2008凝胶图像分析系统进行分析和拍照。1.2.2.2免疫细胞化学染色法鉴定①细胞爬片的制备:在24孔板中放置预先高温高压灭菌的切割好的玻片，然后均匀种植细胞，分三组：对照组，空质粒组，抵抗素基因转染组。每组三个样本,每个样本3复孔。待细胞生长融合达90%时，取出玻片，进行免疫细胞化学染色,同时做阴性对照。②免疫细胞化学染色分析：将制备好的免疫细胞化学染色玻片用HPIAS1000高清晰度彩色图文分析系统进行分析，每张玻片取6个视野，取平均光密度值为免疫细胞化学染色强度定

7、量指标。1.2.3抵抗素基因转染对细胞葡萄糖摄取作用的影响应用微量化的葡萄糖氧化酶法，通过检测细胞培养液上清中的残余葡萄糖浓度的改变，由此判断抵抗素对细胞摄取葡萄糖作用的影响;先行噻唑蓝实验(MTT实验)检测抵抗素对细胞生长增殖作用的影响，排除由于细胞增殖引起的细胞数量的差异给实验带来的误差。1.2.3.1抵抗素基因转染对HepG2细胞生长增殖作用的影响(MTT实验)分三大组：HepG2细胞组，空质粒组和抵抗素基因转染组，每组又分为：对照组，胰岛素组,每组8个样本。分别将各组细胞均匀接种在96孔板中，细胞密度20000个/孔

8、。用含10%小牛血清的DMEM高糖培养液培养，待细胞生长至60%融合时，弃去旧培养液，分别加：正常培养液，含胰岛素培养液，每孔200μl。实验中的药物浓度：胰岛素浓度1×10-7mol/L，药物作用48h后。每孔加含5g/L的MTT20μl，在37℃，5%的CO2孵箱中孵育4h，吸去培养液