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时间:2018-07-09
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1、体外大鼠成骨细胞对破骨细胞形成的影响【摘要】目的通过将鼠成骨细胞与破骨细胞直接共培养的实验方法,研究成骨细胞对破骨细胞分化及功能成熟的影响。方法按照MCSF30μg/L、RANKL50μg/L的浓度对鼠骨髓单个核细胞诱导培养6d,与原代培养3d的鼠成骨细胞按细胞数量1∶1直接共培养,加入1,25(OH)2D31×10-8mol/L和PGE21×10-6mol/L,利用形态学观察、TRAP染色、骨吸收陷窝检测等方法对共培养细胞进行鉴定。结果成骨细胞与破骨细胞共培养时,成骨细胞有明显的生长优势;染色后显微镜下可见大量呈单层排列的成骨细胞,偶见TRAP(+)的破骨细胞。结论成骨细胞对破骨细胞分化
2、及功能成熟的影响与两者的相对数量有关。本实验中,由于成骨细胞快速生长,当其数量多于破骨细胞时,可能使1,25(OH)2D3对成骨细胞RANKL表达的上调作用不足,且PGE2对成骨细胞OPG表达的下调作用不足,从而主要表现为对破骨细胞形成及分化的抑制作用。【关键词】破骨细胞成骨细胞细胞培养RANKLMCSF ABSTRACT:ObjectiveByculturingtheosteoclaststogetherationofmatureosteoclasts.MethodsThebonemarroononuclearcellsofratsaryosteoblastsequantityasth
3、eosteoclasts,ol/LandPGE21×10-6mol/L.Themorphologicalobservation,TRAPstainingandpitstainingaryosteoblasts,thegroorepreponderances.Afterstaining,oreosteoblaststhanosteoclasts.ConclusionTherelationshipbetberosteoclasts,osteoblastsationanddifferentiationofosteoclasts. KEYCSF 正畸牙齿移动是伴随着牙槽骨的吸收和形成过程而发生的
4、,牙槽骨的吸收是牙齿移动的第一步,成熟的破骨细胞(osteoclasts,OC)则是唯一能行使骨吸收功能的细胞[1]。当牙槽骨受到应力或其他刺激因素时,骨组织内发出一定信号,通过骨的微管腔隙传至骨表面的上皮细胞,上皮细胞再将这些信号传达出去,引导外周血中OC的祖细胞向患处定向游动、聚集,大量聚集于此处的破骨细胞前体细胞(preosteoclasts,pOC)与此处的成骨细胞(osteoblasts,OB)接触后开始分化为成熟的OC,并激活该细胞行使骨吸收的功能[24]。OB与OC之间的这种相互作用是与二者的相对数量有关的。因此,本实验拟通过建立OB和OC的直接共培养模型,观察OB对OC分化及
5、功能成熟的调节作用。 1材料与方法 1.1实验动物和试剂4周龄SD雄性大鼠2只和出生1-2d的SD大鼠2只均由西安交通大学医学院实验动物中心提供。主要试剂:αMEM培养基由美国GIBCO公司提供;胎牛血清由灏洋生物有限公司提供;细胞分离液Histopaque1083、巨噬细胞集落刺激因子MCSF、破骨细胞分化因子ODF/RANKL、萘酚ASBI磷酸盐、N,N二甲基酰胺均由美国Sigma公司提供。 1.2玻片及牙本质片的制备将4mm×4mm盖玻片经超声清洗后浸入硫酸重铬酸钾溶液中过夜,充分水洗烤干,高压灭菌后备用。取因正畸矫治需要拔除的健康牙,去除冠部釉质,冷冻后制备4mm×4
6、mm、厚100-200μm的牙本质片,蒸馏水中超声清洗10min×3次,置于75%(体积分数)乙醇中,4℃保存备用,使用前在超净台中紫外灯照射消毒。 1.3OC的培养按照常规方法分离出鼠骨髓基质细胞,用αMEM全培养液[含15%(体积分数)胎牛血清、青霉素100u/mL、链霉素100μg/mL]重悬,加入MCSF(10μg/L),分置于两个25cm2培养瓶中,37℃、5%(体积分数)CO2培养箱内培养24h。24h后,收集细胞悬液,离心,PBS清洗,Histopaque分离液分离单个核细胞,再用αMEM全培养液制备细胞悬液(2×106个细胞/mL)。在两个预置盖玻片的96孔培养板内加入
7、细胞悬液后,每孔中再加入含MCSF30μg/L,RANKL50μg/L的培养液50μL,37℃、5%(体积分数)CO2培养箱内培养备用,每3d换液一次。 1.4OB的原代培养[5]在OC培养的第3天,取出生后1-2d的SD大鼠2只,拉颈处死后在75%(体积分数)的乙醇溶液中浸泡3-5min。无菌条件下,取颅盖骨(扁骨),放入DHanks液中。去除骨膜及周围结缔组织,将其置于盛有αMEM全培
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