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时间:2018-10-02
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1、荧光定量PCR问题疑难解答(一)Q:1.这两天我做标准曲线,线性关系还行,R平方0.998。但是扩增效率只有80%,另外扩增曲线也不是太光滑。2.我用SYBR作为荧光染料,样品的荧光强度也挺低的,只有100-200左右。 A:曲线不光滑有时跟染料的量相关,可以加大看看,或者就是扩增产物太少了。 1.PCR反应效率差:引物,试剂PCR条件的原因。 做realtime-pcr优化体系很重要,你的扩增效率低。可以增加Mg离子的浓度,如果其他条件都好了,还不行,那就是引物的原因,那你就只能重新设计引物了。
2、 2.PCR中混入影响反应的物质: 模板提取方法需要改进 3.样品稀释不准确: 这很重要,做标准曲线很多不好的时候,很多都是倍比稀释的问题,正常情况10倍比稀释时,前后是相差3.32个循环。 Q:荧光定量PCR的灵敏度 A:对于染料法的荧光定量来说,Ct值在13~30之间比较准确,30~33之间需要再次确认,在以上范围内的置信度比较差。 Q:标准曲线要重复两三次吗? A:没有人说做定量PCR标准曲线要重复两三次,只是用来做标准曲线的梯度点最好不要少于
3、4个,否则标准曲线准确性不高。 Q:关于荧光定量标准曲线的制作 A:一般的仪器虽然声称能进行单拷贝检测,但如果不是特别设计的体系,很难做到100拷贝以下的准确定量,一般用来做标准曲线的最小浓度为1000拷贝,再往下可靠性就降低了,这不是稀释或其他什么问题,而是本身你选作标准曲线的浓度以及定量浓度最好不要低于1000拷贝,如果再低一点,100拷贝也勉强可以接受,否则即使你做出来,认可度也不会太高。 Q:溶解曲线高矮 A:Tm值相同,而峰高低有差异是表达丰度不同,同样的扩增产物也会出现Tm值有微小差异
4、,一般差异在1度以内都可以接受。融解曲线的纵坐标表示荧光信号对温度的一阶负导数。 Q:定量PCR没有扩增 A:把定量PCR的产物跑个电泳,看看有无产物,如果电泳有条带,说明PCR是成功的,只是荧光信号没有读取到,这时要调整染料或探针的浓度(看你是染料法还是探针法);如果电泳没有条带,那么还要在定量PCR仪上优化实验条件。虽然你在普通PCR仪上优化过条件,但换了定量PCR仪,由于两台仪器的升降温速度及温度精密度等指标存在差异,同样的条件做不出PCR也是可能的。 由于很多因素的影响,扩增子的溶解温度会有
5、一定变异。溶解温度会受特殊缓冲液的pH值,所用Taq聚合酶,SG和MgCl2浓度和其他因素的影响。要做溶解曲线的对比你首先要确保所用的条件相同。 Q:SG的稳定性如何? A:只要不进行稀释,SG是非常稳定的。一旦稀释,可以保存1周到3个月,这取决于冻融次数,推荐配置成一定浓度的贮存液,用时现用现配稀释液。 为优化SG反应,有必要在所有的常规步骤来确定,优化扩增反应的条件(合适的MgCl2、dNTP和Taq酶浓度等)。结果应该在凝胶电泳上有唯一的条带。SG分析的优化主要包括以下4个因素:
6、a)SG浓度 b)引物浓度 c)MgCl2浓度 d)温度和反应次数 推荐的SG终浓度变动范围是1:5000到1:100000。经常用到的浓度范围是1:10000到1:70000。引物浓度的优化应该测试不同浓度的正向和反向引物。引物浓度的范围应该是50nM到300nM,然而,也有例外的情况。 Q:荧光定量污染解决办法 A:几个月前我也有跟你一样的遭遇,当时跳楼的心都有。后来美国来人给培训,按照他们的要求,污染果真就给控制了,两个月来一直还很好。以下的经验希望对你有用。 1.配反应体系和加模
7、板要在不同的屋子进行; 2.配体系的屋子准备一件干净的白大衣,每次进去都要记得换白大衣,至少要把别的屋子穿的白大衣脱掉; 3.分装好体系以后把反应板/条放在一个有盖的干净的托盘中端到加样的房间; 4.配体系戴的手套可以带到加样的房间,反过来不可; 5.PCR完毕后,反应产物拿到别的屋子扔掉; 6.最重要的就是不要把DNA带到配体系的屋子,以上几点也都是为了这一目的。 Q:荧光定量real-timePCR重复性问题 A:建议不要只加1ul,而是稀释10倍左右然后加10ul,这
8、样有助于改善重复性。 如果你测的是拷贝数,重复性不好是很难避免的。我感觉用SYBRgreen作realtime的误差还是比较大的,它的优势在于灵敏度高,但如果想精确定量,还是比较困难的,只好重复很多次,或者多花钱买标记的引物,那个特异性最好。
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