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时间:2020-09-12
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1、生物技术综合大实验——原核系统表达的绿色荧光蛋白的纯化宋捷()纪成功孔令浩王玉康王鹏程董奉新(西北农林科技大学)摘要:绿色荧光蛋白(GFP)的提纯是一套十分成熟的蛋白质提纯系统,本教学实验使用原核的大肠杆菌系统,通过转化带有GFP基因的原核表达载体到BL21表达菌株中,通过氨苄抗性筛选,用阿拉伯糖诱导表达。通过硫酸铵盐析,疏水层析,阴离子交换柱层析,凝胶过滤层析,各级纯化用紫外显色和SDS凝胶电泳检测,终末纯化后纯度较高。本实验较为成功的提取提纯了GFP,并较好训练蛋白质提纯技术。关键词:GFP蛋白提纯疏水层析离子交
2、换层析凝胶过滤层析1.介绍:GFP最早是由下村修等人在1962年在一种学名Aequoreavictoria的水母中发现。其基因所产生的蛋白质,在蓝色波长范围的光线激发下,会发出绿色萤光。分子质量约为27kd,有238各氨基酸基团],三维结构为β圆柱,圆柱两端由一些较短的α螺旋盖住,圆柱中央是几段α螺旋,生色团位于圆柱中央。该结构性质稳定。本实验通过该分子的较为稳定,疏水特性,易电离成阳离子,分子较小的体征,选择盐析,疏水层析,阴离子交换层析,凝胶过滤层析逐级提纯GFP。2.材料和方法2.1.pGFP质粒克隆及提取质粒
3、是已经构建完成的,GFP基因表达由易受阿拉伯糖诱导的启动子控制,及常表达的氨苄抗性。碱裂解法(试剂实验室自配)提取。取1ml菌液于1.5ml离心管,1000rpm离心30s,弃上清——加入100μl提质粒溶液I,震荡混匀——加入200μl溶液II,温和混匀置至于冰上5min——加入150μl溶液III,混匀,置于冰上5min——1000rpm离心3min,转移上清于另一新1.5ml离心管,加入900μl无水乙醇,混匀,室温静置3min——12000rpm离心5min,弃上清,待其干燥——于30μlTE中溶解,冰上暂存
4、。2.2.转化取1.5mlOD6000.3~0.4BL21,冰浴30min——4000rpm离心10min,弃上清——加入200μl0.1MCaCl2——悬浮沉淀,冰浴15min——4000rpm离心10min,弃上清——加入200μl0.1MCaCl2悬浮沉淀,备用。取1μl质粒DNA加入制备好的感受态细胞,温和混匀,置于冰上30min——42°C水浴锅,热击45-60s——冰浴10min——加入900μlLB培养基,37°C,150rpm震荡培养30min——涂板(LBp/ara),37°C温育过夜。2.3.筛选
5、重组子及扩大培养将平板放置紫外灯下检测,标记,挑取绿色荧光单菌落,于5mlLB(amp)培养基中37°C、150rpm震荡培养7小时——吸取2ml菌液,置于200mlLB(amp/ara)培养基中,37°C、150rpm振荡培养过夜。本组的平板并无可视菌落,所以挑去他组菌落1.1.收菌破碎收集菌液200ml于250ml离心管,共4管,5000xg离心10min,弃上清——每管30ml溶解缓冲液(50mMTris-HCl,1mmol/LEDTA)重悬沉淀,将4管合并为1管——每管加入60μl溶菌酶,混匀将离心管置于冰上
6、,超声波破碎仪探头插入离心管,探头离底部约1cm且不触离心管壁——900w,超声3s,静止3s,共8min,重复3次——7500xg离心15min,在紫外灯下观察沉淀(留样)和上清(留样),取上清备用。1.2.盐析取上清定容至80ml——取10ml做预实验——用溶解缓冲液稀释至100ml——分装至10只试管,每管10ml——称取不同浓度梯度(NH4)2SO4(见下表),室温静置15min——各取1ml于1.5ml离心管,7500rpm离心15min——在紫外灯下观察GFP沉淀情况,可看出,第五管((NH4)2SO4含
7、量50%)时出现沉淀(杂蛋白),第八管((NH4)2SO4含量80%)沉淀量最大(GFP)——在剩余70ml上清中加入20.37g(NH4)2SO4(含量50%),室温静置30min——7500rpm离心15min,取上清——加入36.12g(NH4)2SO4(含量80%),室温静置15min——7500rpm离心15min,弃上清,-20°C保存。(NH4)2SO4(%)10%20%30%40%50%60%70%80%90%100%(NH4)2SO4(g)0.701.061.642.262.913.614.365.
8、166.037.061.3.疏水层析配制平衡缓冲液:2mol/ml(NH4)2SO4/TE,PH8.0startbufferA:1.3mol/ml(NH4)2SO4/TE,PH8.0洗脱缓冲液B:10mMTris,1mMEDTA,PH8.0将沉淀好的GFP用10ml平衡缓冲液溶解,9000rpm离心10min,移上清液至另一大离心管备用。连接仪
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