大肠杆菌感受态细胞的几种制备方法.doc

大肠杆菌感受态细胞的几种制备方法.doc

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时间:2020-05-18

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1、大肠杆菌感受态细胞的几种制备方法感受态细胞(Competentcells):常态的细胞不能摄入外部溶液中的DNA,所以要转化质粒DNA进入大肠杆菌必须首先制备感受态的大肠杆菌细胞。受体细胞经过一些特殊方法(如:CaCl,RuCl等化学试剂法)的处理后,细胞膜的通透性发生变化,成为能容许多有外源DNA的载体分子通过的感受态细胞(competentcell)。转化:是将异源DNA分子引入一细胞株系,使受体细胞获得新的遗传性状的一种手段,是基因工程等研究领域的基本实验技术。进入细胞的DNA分子通过复制表达,才能实现遗传信息的转移,使受体细胞出现新的遗传性状。转化过

2、程所用的受体细胞一般是限制-修饰系统缺陷的变异株,即不含限制性内切酶和甲基化酶的突变株。α-互补现象:因为许多载体都带有一个LacZ基因的调控序列和头146个氨基酸的编码信息,编码α-互补肽,该肽段能与宿主编码的缺陷型β-半乳糖苷酶实现基因内互补(α-互补)。当这种载体转入可编码?-半乳糖苷酶C端部分序列的宿主细胞中时,在异丙基-β-D硫代半乳糖苷(IPTG)的诱导下,宿主可同时合成这两种肽段,虽然它们各自都没有酶活性,但它们可以融为一体形成具有酶活性的蛋白质。所以称这种现象为α-互补现象。由互补产生的α-半乳糖苷酶(LacZ)能够作用于生色底物5-溴-4-

3、氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷(X-gal)而产生蓝色的菌落,所以利用这个特点,在载体的该基因编码序列之间人工放入一个多克隆位点,当插入一个外源DNA片段时,会造成LacZ(α)基因的失活,破坏α-互补作用,就不能产生具有活性的酶。所以,有重组质粒的菌落为白色,而没有重组质粒的菌落为蓝色。方法一:TSS方法制备感受态细菌(又称一步法)一、准备工作1、缓冲液1×TSS的配制事先配制1M的氯化镁:20.3g氯化镁(6分子水结晶),定容于100ml去离子水后封装,不用灭菌。取干净的100ml量筒和100ml烧杯,用量筒量取100ml去离子水,加入至烧杯中,取1g蛋

4、白胨,0.5g酵母抽提物,0.5g氯化钠,10gPEG(MW=3350),5mlDMSO,5ml的1M氯化镁,溶解后用盐酸或者氢氧化钠调整pH为6.5,混匀后用0.22um滤器过滤除菌。储存在4度,保质期约6个月。2、已划平板(或者用枪头沾取并稀释后涂布)并在培养箱中过夜培养的菌种—Dh5α,用于接种并振荡培养。两个锥形瓶,分别装有30ml和50mlLB,灭菌后置于4℃冰箱备用。3、若干已灭菌的琼脂平板,一个未加抗生素,用于第二步的接种,其余做转化用。二、感受态制备程序前一天晚上调单菌落至30mlLB中过夜培养(12-16h),按1:100比例将过夜培养的菌

5、液(500ul)加入到新鲜的50mlLB培养液中,于37℃振荡培养至OD600约为0.4(培养时间2h40~50min)。冰浴30分钟后4度1000g离心10min,弃上清,收获细菌。加入原体积十分之一(这里为5ml)的1×TSS液(冰预冷)悬浮细胞,然后分装成100μl/份,全部冰上操作,-80℃保存。三、转化取一管(100μl)感受态细菌,(冻存细胞应置于冰上缓慢融化后立即使用)加入3-5μlDNA(0.1~100ng),轻轻混匀后冰浴30min。加入0.9ml含20mmol/L葡萄糖的LB培养液,37度150r/min温和振荡培养60min,涂布,室温

6、放置约20分钟后放于37度恒温培养箱过夜培养(17-20h)。方法二:CaCl2法细菌转化的方法多以Mendel和Higa(1970)的发现为基础,其基本方法是用冰预冷的CaCl2或多种2价阳离子等处理细菌,使之进入感受态得以转化。  用CaCl2制备新鲜或冷冻的大肠杆菌感受态细胞,常用于成批制备感受态细菌。本法适用于大多数大肠杆菌菌株,且迅速、重复性好。  1.从37℃培养16~20h的新鲜平板中挑取一个单菌落(如大肠杆菌DH5α),或1ml新鲜的16~20h过夜培养物,转到一个含有100mlLB培养基的1L或500ml烧瓶中。于37℃剧烈振摇培养约2~3

7、h(旋转摇床200~300r/min),每隔20~30min测量OD600值≈0.4。  2.在无菌条件下将细菌转移到一个,用冰预冷的50ml聚丙烯离心管中,在冰上放置10~20min。  3.于4℃用SorvallGS2转头(或与其离心管相配的转头)以4000r/min离心10min,以回收细胞。  4.倒出培养液,将管倒置1min以使最后残留的痕量培养液流尽。  5.以10ml用冰预冷的0.1mMCaCl2重悬每份沉淀,放于冰上。  6.于4℃用SorvallGS3转头(或与其相应的转头)以4000r/min离心10min,以回收细胞。  7.倒出培养液

8、,将管倒置1min以使最后残留的痕量培养液流尽。  

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