实验四 小鼠精子畸形试验.ppt

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1、院系：生化环院任课老师：吴雨龙任课班级：09食品、行09食品食品专业食品毒理学实验精子畸形试验是检测受试化学毒物能否破坏哺乳动物精子正常形态的实验方法。通过实验，学习和掌握小鼠精子畸形试验的原理和步骤。实验四小鼠精子畸形试验实验目的1.1.实验原理2.精子畸形是指精子的形状异常和异常精子数量的增多。生殖系统对化学毒物的作用十分敏感，在其他系统还未出现毒性反应前，生殖系统可能已出现了损害作用。正常情况下，哺乳动物的精液中也存在少量的畸形精子，但在某些化学毒物的作用下，特别是在可引起生殖细胞遗传性损伤的化学毒物作用下，哺乳动物睾丸产生的畸形精子数量可大量增加。因

2、此，可以用实验原理2.检查雄性动物接触化学毒物后精子畸形率的高低，来反映该化学毒物的生殖毒性和对生殖细胞潜在的致突变性。化学毒物引起精子畸形的机制尚未完全清楚。正常情况下，精子的成熟和正常形态发生过程受多种基因调控，一旦这些基因中的一个或多个在化学毒物的作用下发生突变，就会导致畸形精子数量的大量增加。一般认为，常染色体上的基因控制实验原理2.精子畸形，Y-性连锁基因控制畸形精子的表现。某些特异的染色体重排，如性、常染色体易位，是化学毒物诱发哺乳动物畸形率增高的主要机制。由于精子畸形有可能影响生殖。因此，当受检物引起精子畸形率增高，即使不一定是化合物诱发生殖细

3、胞突变的结果，但也表明受试物直接或间接损害精子，从而可能影响生殖。实验动物：实验材料3.体重18-22g小鼠。实验器材：灌胃针、注射器5套、眼科剪、眼科镊、显微镜、饲养笼等。实验试剂：磷酸盐缓冲液、生理盐水、无水乙醇、2%伊红水溶液、甲基磺酸甲酯或甲基磺酸乙酸或环磷酰胺。4.实验步骤1.动物选择成熟的大鼠、小鼠均可使用。由于小鼠较为经济，且有大量实验证实小鼠在该试验系统中对化学毒物最为敏感，故一般采用雄性小鼠，年龄宜在6～8周。2.剂量与分组试验至少应设3个以上剂量组，并同时设立阳性对照组和阴性对照组。接触化学毒物后每组至少应存活5只动物。最高剂量组5d总剂

4、量应能使部分动物死亡。一般可采用LD50的2～4倍剂量，或预先给予化学毒物的LD50，以求得最高总剂量，然后以它的1/2（或1/5、1/10）作为下一剂量组的接触剂量，依此类推。4.实验步骤阳性对照可用环磷酰胺20mg/kg或甲基磺酸甲酯75mg/kg或甲基磺酸乙酯60mg/kg，进行腹腔注射，每天一次，连续5d。阴性对照选用给予相同体积的溶剂。3.染毒与采样可采用一次或每天一次连续5d的方法进行染毒。染毒途径多用腹腔注射，也可采用与人体实际接触化学毒物相同的途径，如经口、吸入和皮肤接触等。一般认为精原细胞后期或初级精母细胞早期对化学诱变剂较为敏感，在接触化

5、学毒物后4～5周精子畸形率最高，故选择在第一次染毒后第35d进行采样。也可在染毒后第1、第4和第10周4.实验步骤分三次采样，或者在染毒后每周采样一次，连续进行动态观察，直至精子形态恢复正常。4.制片用颈椎脱臼法处死小鼠，剪开腹腔，分离并摘取双侧附睾，将附睾放入盛有约3ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的小平皿中，以眼科剪将附睾尾剪成小块，用吸管将悬浮液轻轻吹打5～6次，静置3～5min，用四层擦镜纸滤除组织碎片，吸取此精子悬液滴于清洁载玻片上，均匀推片，待玻片晾干后用甲醇固定5min，干燥后即可镜检观察精子形态。也可用2%的伊红水溶液染色1～2h后再作镜检。4.实

6、验步骤5.阅片在高倍镜下检查精子形态，可加上蓝色或绿色滤光片。每只小鼠检查完整的精子200～500个，每个剂量组至少检查1000个精子。精子畸形主要表现在精子的头部，可分为：无钩、香蕉形、无定形、双头、双尾、尾折叠及胖头等形态。头部重叠或全部重叠的精子、无尾精子不进行计数。5.结果分析分别计算各剂量组的精子畸形发生率。各剂量组的精子畸形率与阴性对照组之间的差异分析采用秩和检验。由于不同品系小鼠的精子畸形率本底值差异较大，且影响的因素也较多，故在结果分析时，应首先观察阳性和阴性对照组的试验结果。阳性对照组精子畸形率的增高应在本实验室的历史记录范围之内，并与阴性

7、对照组有显著性差异（P<0.01），阴性对照组的畸形精子率也应与自己实验室的历史记录接近，否则所得结果不可靠，试验应重做。5.结果分析出现可重复的剂量反应关系时，可判断试验结果为阳性。但要判定某一化学毒物为精子畸形诱变剂，至少应该有两个相邻剂量组的精子畸形率比阴性对照组显著增高（P<0.01）；或达到阴性对照组的2倍或2倍以上，并且试验结果能够重复。如果试验组的染毒剂量已使动物发生死亡，而精子畸形仍未见增加，则可判定试验结果为阴性。在受试化学毒物的毒性作用较低而不至于引起动物死亡时，应当记录最大的染毒剂量。5.结果分析精子畸形试验还可进行畸变类型分析，不同部

8、位的畸形对精子的活动能力和使卵子受孕的能力有不同的影