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时间:2020-03-16
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1、Real-timePCR检测技术原理和问题处理2014-06-25★实时荧光定量PCR检测技术(Real-timePCR)荧光定量PCR(Realtimefluores-cencequantitativePCR,RTFQPCR)是1996年由美国AppliedBiosystems公司推出的一种新定量实验技术,它是通过荧光染料或荧光标记的特异性的探针,对PCR产物进行标记跟踪,实时在线监控反应过程,结合相应的软件可以对产物进行分析,计算待测样品模板的初始浓度。★实时荧光定量PCR检测技术(Real-timePCR)定量PCR的数学原理定量PC
2、R的化学原理定量PCR的光学原理什么是PCR?PCR的反应过程RT-PCR原理图荧光定量PCR的数学原理1、Baseline(基线)2、Threshold(阈值)3、ThresholdCycle(CT值)4、[DNA]0(初始模板)Threshold(阈值)[DNA]0(初始模板)ThresholdCycle(CT值)Baseline基线基线反应荧光明显增加前的背景荧光值。默认为3-15cycles的信号值线性图谱对数图谱阈值阈值=基线(背景)信号的标准偏差的10倍,即PCR扩增信号进入相对稳定对数增长的最下限,通常设定在S型扩增曲线的增长拐点
3、处附近。Ct值扩增反应中,当荧光信号增长到大于阈值时所对应的循环数,即PCR增长信号与Threshold发生交汇的循环数,也是FQ-PCR判断阴阳性和进行定量分析的依据。[DNA]0确定初始模板的浓度初始DNA量越多,荧光达到某一值(域值)时所需要的循环数越少Log浓度与循环数呈线性关系,根据样品扩增达到域值的循环数就可计算出样品中所含的模板量Real-timePCR动力学曲线和四个阶段只有在荧光信号指数扩增阶段,PCR产物量的对数值与起始模板量之间存在线性关系,我们可以选择在这个阶段进行定量分析。PCR理论方程只在指数期成立。PCR产物的量与
4、扩增循环数间的理论方程Rn=RB+X0(1+e)nRsRn:第N次PCR循环时的荧光信号强度RB:背景信号强度X0(1+e)nRs:每个分子的荧光强度与分子数目的乘积经过一系列移项、取对数等复杂数学公式变换:得到:Ct=klgX0+b线性方程,lgX0越大,则CT值越小!从荧光信号实现定量结果一、检测荧光信号增长,获取样品CT值从荧光信号实现定量结果二、绘制标准曲线从荧光信号实现定量结果三、以待测样品的Ct值对[DNA]0作图,得到定量结果定量PCR的数学原理定量PCR的化学原理定量PCR的光学原理常用的荧光标记方法1、DNA双链特异性染料S
5、YBRGreen、SYTO9、LCGreen、Evagreen2、序列特异性探针TaqMan、MolecularBeacons(分子信标)、DualProbes(FRET)、LNA(LockedNucleicAcid)Double-DyeprobesSYBRGreenI工作原理1、每形成一个DNA双链,就有一定数量的染料结合上去2、染料一结合,就产生荧光信号3、信号强度与DNA分子总数目成正比SYBRGreenI工作原理图片演示熔解曲线(Dissociationcurve)目的:在PCR之后分析产物特异性基本程序:-解链;-复性;-升温检测;-
6、降温;软件自动分析融解曲线(Dissociationcurve)PCR双链产物荧光强度与温度的函数图,用于确认产物的特异性。Tm值:50%DNA变成单链时所需要的温度,此温度与双链DNA的长度、GC含量有关,可部分代表产物序列的特异性;PCR反应完成后,控制体系温度缓慢升高,双链DNA解链成为单链DNA,SYBRGreen被释放,荧光信号逐渐减弱;当体系到达某一特定温度时,某些DNA双链会突然完全解离,荧光强度也显著减弱;对融解曲线求一阶导数,峰值代表斜率改变最大值,该处所对应的横坐标值(温度),即Tm融解曲线(Dissociation
7、curve)PCR双链产物荧光强度与温度的函数图,用于确认产物的特异性。原始图谱导数图谱只有染料法才需要做熔解曲线,探针法没必要。SYBRGreenI的优缺点成本低不需要制备序列特异的针对性探针,且试剂便宜适合初步筛查先用SYBR筛查,再对少数关键样品用探针法确认配合熔解曲线分析需鉴定PCR反应是否有杂带、引物二聚体特异性问题不能分辨主带与杂带,给出所有双链DNA的总信号多重定量问题每个PCR管只能检测一个目标基因Taqman原理Taqman荧光定量技术是以Taqman荧光探针为基础,Taqman荧光探针为一寡核苷酸,两端分别标记一个荧光报告基
8、团和一个荧光淬灭基团。探针完整时,发射基团发射的荧光信号被淬灭基团吸收;PCR扩增时,Taq酶的5’-3’外切酶活性将探针酶切降解,使荧光发射基团和荧
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