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1、实验三 重组质粒DNA转化大肠杆菌实验目的学习将重组质粒DNA导入大肠杆菌的方法学习氯化钙法制备大肠杆菌感受态细胞的方法为下一步重组体筛选做准备实验原理遗传学中转化的基本含义是使细胞获得一新的可遗传的表型性状。分子克隆中用人工的方法将重组质粒DNA导入大肠杆菌细胞，使携带有重组质粒的大肠杆菌获得在抗生素平板上生长的能力，从而与不携带重组质粒的的细菌区分开来，这个过程就是转化。将重组质粒转化进受体细菌时，需诱导受体细菌产生一种短暂的感受态以摄取外源DNA。大肠杆菌细胞经过一些特殊方法（电击法、CaCl2等化学试剂法）的处理后，细胞膜的通透
2、性发生了暂时性的改变，成为能允许外源DNA分子进入的细胞即感受态细胞(Competentcells)。转化(Transformation)是将外源DNA分子引入受体细胞，使之获得新的遗传性状的一种手段，它是微生物遗传、分子遗传、基因工程等研究领域的基本实验技术。0.1mol/LCaCl2是一种低渗溶液，在0℃低温处理大肠杆菌细胞时，细胞膨胀成球形，DNA可吸附在其表面。在短暂的热冲击（如42℃）下，细胞可吸收外源DNA。为了鉴定这些转化子，须利用质粒编码的筛选标记，这些标记赋予细菌新的表型，是成功转化的细菌很容易被筛选出来。pET32a
3、质粒带有氨苄西林抗性基因（Ampr），其重组体转化的大肠杆菌能够在含氨苄西林的培养基上生长，而未转化的受体菌则不能再这种培养基上生长。Ampr：氨苄西林抗性基因–β内酰胺酶多克隆位点（MCS）：外源DNA片段的插入位点Amps菌株Ampr涂布于含Amp的培养基上，可以生长。次日可见白色菌落--转化子。培养基上含有X-Gal和IPTG时，可使用蓝白斑筛选方法鉴别真正的重组的转化子。pET32apET32a结构的三大要素：多克隆位点选择标记（耐药性，LacZ）复制起始位点种类：质粒噬菌体酵母人工染色体（YAC）反转录病毒载体表达载体等pET
4、-32aVectorThepETSystemisthemostpowerfulsystemyetdevelopedforthecloningandexpressionofrecombinantproteinsinE.coli.pET-32cloning/expressionregionVector(pET-32a)Genefragment(SmPR10)pET32a-SmPR10材料、设备及试剂材料E.coliDH5α菌株:R-、M-、Amp-(转化过程所用的受体细胞一般是限制修饰系统缺陷的变异株，即不含限制性内切酶和甲基化酶的突变体(
5、Rˉ,Mˉ),它可以容忍外源DNA分子进入体内并稳定地遗传给后代。）pET32a-SmPR10质粒DNA（浓度：2ng/μl):实验室自制设备恒温摇床；电热恒温培养箱；台式高速离心机；超净工作台；低温冰箱；恒温水浴锅；分光光度计；微量移液枪。试剂1、LB固体和液体培养基LB培养基配方：（单位g/L）胰蛋白胨10酵母提取物5NaCl10琼脂粉（1.5%）15g（注：LB液体培养基不加琼脂粉）按配方称量药品,加入一定量的ddH2O后置电炉上加热熔解琼脂，待琼脂完全熔解后加入ddH2O定容至1000ml,用NaOH调节pH至7.0。121℃湿
6、热高压灭菌20分钟，待冷却至60℃左右,在超净工作台中加入一定量的Amp储存液,使终浓度为100μg/ml,摇匀后用培养皿铺板。2、Amp母液：称取氨苄西林100mg溶于1mlddH2O中，0.22μm滤器过滤除菌，用1.5ml离心管分装后储存于-20℃冰箱.3、0.1mol/LCaCl2溶液:称0.56gCaCl2(无水分析纯),溶于50ml重蒸水中,定容至100ml,用0.22μm滤器过滤除菌或高压灭菌。EP管分装于4℃冰箱储存.4、pET32a-SmPR10质粒：实验室自制操作步骤（一）受体菌的培养1、取-70℃或-20℃贮存的大
7、肠杆菌DH5α菌种，在LB培养液中培养过夜，进行活化;2、取几微升活化后的菌液（取量视菌的密度而定）在LB平板上涂布,于37℃培养箱中培养24h；从LB平板上挑取单菌落,接种于3-5mlLB液体培养基中,37℃下振荡培养12小时左右,直至对数生长后期。3、将该菌悬液以1:100-1:50的比例接种于LB液体培养基中,37℃振荡培养2-3小时至OD600＝0.5左右(生长对数期）。（注：这一步非常关键。培养过度的菌液含有较多的“老”细胞，制备成感受态细胞后其接受外援DNA能力较低，从而导致转化率降低。）（二）、感受态细胞的制备(CaCl2
8、法)1、将菌液转入1.5ml离心管中,冰上放置10分钟,然后于4℃、4000rpm离心10分钟。2、弃去上清,用预冷的0.1mol/L的CaCl2溶液1ml轻轻悬浮细胞,冰上放置10分钟后,4℃、4000r
