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1、安徽农业科学,JournalofAnhuiAgri.Sci.2008,36(26):11383-11385责任编辑罗芸责任校对李洪建立动物腹泻模型的研究进展3121111111曹玲芝,马利芹,王丽叶,张晓利,徐倩倩,霍晓青,靳喜朋,秦建华,董世山(1.河北农业大学动物科技学院,河北保定071001;2.河北北方学院动物科技学院,河北张家口075001)摘要建立腹泻模型是研究腹泻发病机制的重要手段,不同类型的腹泻需要建立相应的腹泻模型,主要包括急性腹泻模型、慢性腹泻模型、溃疡性结肠炎腹泻模型等,就目前常用的动物腹泻模型的建立方法及其
2、特点进行了总结。关键词动物;腹泻模型;研究进展中图分类号S851.3文献标识码A文章编号0517-6611(2008)11383-03ResearchProgressofBuildingAnimalDiarrheaModelsCAOLing2zhietal(CollegeofAnimalScienceandTechnology,HebeiAgriculturalUniversity,Baoding,Hebei071001)AbstractThemostimportantmethodtoresearchanimaldiarrheaw
3、asbuildingdiarrheamodels.Differenttypesofdiarrheaneeddifferentdi2arrheamodels,suchasacutediarrheamodel,chronicdiarrheamodelandulcerativecolitismodel.Thecommonlyusedanimaldiarrheamodelsandtheaspectsweresummarized.KeywordsAnimal;Diarrheamodel;Researchprogress[1]在医学研究中,为
4、了阐明疾病的发病机制或药物疗效,鼠单只单笼饲养,鼠笼笼底垫有滤纸。腹泻率为100%。常需要建立动物的疾病模型。目前已有多种动物疾病模型,2.2细菌性腹泻模型有关动物细菌性腹泻模型的报道较如心脑血管病模型、肾病模型等。为了研究腹泻的发病机制少,主要是大肠杆菌诱导动物腹泻模型,此模型旨在观察抗和开发抗腹泻药物,国内外许多学者对动物腹泻模型进行了菌药物对肠道致病菌的杀灭作用。由赵荣山等研制的致病[1]大量的研究。笔者就目前几种动物腹泻模型的制备方法性大肠杆菌O111诱导小鼠腹泻模型取得了比较满意的效果。及特点作一综述。制备方法为选用18
5、~22g昆明种小鼠。菌种经分离培养,使1腹泻模型的评价标准用时稀释成不同浓度,采用比浊法进行菌量计数,计数后距[1]腹泻模型标准的主要指标一般是腹泻率和腹泻指数。离感染时间不超过2h。腹腔注射,半数致死量为3.0①腹泻率=腹泻的动物数/该组动物总数×100%。②腹泻亿/只,95%可信区间,小鼠死亡时间最早为注射后4h,最晚指数=稀便率×平均稀便级。式中稀便率为每只动物所排在72h,73h后不再死亡。半数致腹泻量为2.45亿/只,95%的稀便数与总便数之比。稀便级表示每只动物稀便的程度,可信区间,小鼠发病时间在给药3h后,症状为倦怠
6、、腹泻、寒以稀便污染滤纸的直径定级,分为4级:<1cm为1级,1~战。结果表明腹腔注射诱导动物腹泻模型是比较可行的方[4]1.9cm为2级,2~3cm为3级,>3cm为4级。平均稀便级法。=所有稀便级数/稀便次数。③模型组与对照组比较,腹泻2.3肠道菌群失调动物腹泻模型研究微生态制剂的保护率及腹泻指数差异有统计学意义。作用必须使用肠道菌失调的腹泻模型。药物性腹泻模型并2动物急性腹泻模型的制备不适宜作观察微生态制剂对腹泻动物的保护作用。这是由2.1药物引起的动物腹泻模型药物诱发的动物腹泻模型于这些动物的肠道菌群失调在腹泻早期与腹泻形
7、成几乎无主要使用容积性泻药、刺激性泻药或润滑性泻药,如利用硫关。另外即使使用微生态制剂也未必能很快调整肠道功能酸镁、蓖麻油、番泻叶、石蜡油等喂服动物(小鼠、大鼠、猫、狗的紊乱,因此必须制备肠道菌群紊乱的动物模型。[2]等)诱导腹泻。此模型的建立方法为:体重20g左右SPF小鼠(试验前番泻叶是全世界应用最广泛的导泻剂,在国内外应用已禁食6h,可自由饮水)喂服氨苄青霉素(15~40g/kg)后加有千余年的历史。该物质中含蒽醌衍生物,有效成分主要为福氏志贺痢疾杆菌和鼠伤寒沙门氏菌。一般先使用抗生素79番泻苷A、B,其泻下作用及刺激性较蒽
8、醌类及其他泻药更喂服SPF小鼠,8h后再喂服攻击菌(10~10CFU/ml,0.2强,因而泻下时可伴有腹痛。番泻苷A、B经胃和小肠吸收ml/次)。结果表明:氨苄青霉素加福氏痢疾杆菌和鼠伤寒沙后,进入肝脏中分解,分解产物经血液循环兴奋骨盆神经节门氏菌