蛋白提取步骤

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1、提蛋白及WB的步骤整个过程细胞或蛋白都必须放冰上准备工作：前一天准备：借钥匙、检查细胞裂解液相关试剂是否充足、当天准备：洗玻璃板、开紫外，冰块、碎冰、标记1.5ml离心管及0.6ml离心管、细胞刮板、开低温高速离心机细胞裂解液配制：1mlcelllysis10ulNP-40（离心机后）25ul焦磷酸钠40ulNaF1ulβ-甘油磷酸2ulNa3VO41ul蛋白酶抑制剂（用完即放回冰箱）10ulPMSF（最后加，随加随用，有毒）细胞裂解和收集1.观察细胞状态，并准备提蛋白：吸走培养基、用PBS洗细胞两次（倾斜贴壁加PBS，左右轻轻摇），倾斜贴壁吸走PBS。2.将细胞盘拿到外间冰上，加裂解

2、液（体积网上推荐：一般106加0.1ml），冰上静置1-2min。3.刮细胞：细胞刮板每次用之前拿水涮一涮，甩干，然后从中间到外面打圈刮，再从下往上，从上往下全面刮，（刮的时候要迅速），最后用枪吸取裂解液至离心管。细胞破碎1.超声波破碎细胞：准备三个小烧杯，加满冰块，三个小夹子。（超声波破碎仪的铁棒不要碰到离心管的壁和底部）超声波设置：工作功率5%工作时间3min开机时间15s，关机时间30s温度0度，报警温度1度2.4℃、13000r/min，离心15min。（离心机用后一直保持打开的状态，）蛋白保存3.蛋白保存及分装：吸上清液至0.6ml离心管，涡旋、吸一半至另一个管中，涡旋。-8

3、0℃保存。注意事项：PMSF一定要现用现加，PMSF在水溶液中不稳定，30min内就会降解一半。样品处理超过1h，补加一次。BCA测定蛋白浓度1、测空白板，选差异较小的孔。BCA测定法波长570，Bracford：5952、标准蛋白的稀释（5mg/ul）：分装1mlPBS来使用，稀释标准蛋白至0.5mg/ul。取5ul标准蛋白+45ulPBS3、加样：浓度00.10.20.30.4BSA（ul）0481216PBS（ul）201612844、样品蛋白稀释20倍：2ul蛋白+18ulPBS5、配BCA：每个孔200ul，一个样品2个重复，A:B=50:1,根据样品数来计算BCA的用量，一

4、般防止损耗，多算一个样。6、加BCA：悬空加、37℃孵育30min。（手不能碰板的底部，影响测定结果）7、计时30min8、配分离胶，灌胶，加水封。9、计时20min。10、测蛋白：先振板、再设置参数。11、计算上样体积:1、配浓缩胶，灌胶，加梳子，等1-2min，出现缩胶的地方补上。2、打开干式加热器10、蛋白质上样：根据计算结果乘以稀释倍数，算出蛋白浓度，以体积最大的为准，其他用水补足。(最大上样量为20ul，除去buffer的体积，蛋白质最大上样体积为16ul)标记0.6ml离心管加样顺序：水、buffer(1/4)、蛋白、离心-涡旋-离心。100℃变性10min（迅速，确保变性

5、程度一致）11、计时10min，变性10min。12、安装电泳槽:电泳液（1X）：配制：90ml（10X）+810ml水（只能用一次）液面刚覆盖胶，不能有气泡。13、上样：maker上样量为3ul。依次上样（吸样品时最好一次吸完）枪头不能撬板，笔直打进去14、电泳分离胶100V，20min左右、条带都跑开即可。浓缩胶145V1h有等紫色部分跑到底结束。转膜准备工作：转移缓冲液(只能用2次)、三层滤纸、海绵、PVDF膜PVDF膜用之前用甲醇浸泡数秒。用海绵和滤纸之前先浸湿。转膜：负极（黑板）海绵-三层滤纸-胶-PVDF膜-三层滤纸-海绵-正极（白板）。三层滤纸和膜都需要赶气泡。安装转移槽

6、：加转子、冰盒，安装时夹子面朝上15、转膜电压100V90min。（视蛋白大小而定，蛋白分子小的可适当缩短时间）16、取膜晾干、剪个角作为标记，保鲜膜保存4℃。孵育抗体1、膜的活化：把膜晾干，甲醛浸泡（回收）膜数秒、无菌水洗3次、TBST洗2次。2、封闭：配封闭液：3%的牛奶：4mlTBST+0.12g脱脂奶粉，混匀、涡旋。3、4℃封闭一小时、盖盖子。4、TBST洗三次、每次10min。（封闭液与一抗相同则不用洗）5、一抗孵育：加一抗，1:1000（比例视情况定）、密封孵育、盖盖子。6、4℃过夜孵育。7、回收一抗(回收到对应的离心管，立即放回4℃冰箱)8、TBST洗三次、每次10min

7、。9、二抗孵育：加二抗，室温孵育1h。10.回收二抗，TBST洗3次，每次10min(最后一次不要倒掉)（可以准备洗膜用的东西：检查显影液是否能用）显影11.准备显影的东西：显影液、镊子、剪刀、光片、保鲜膜、计时器、配发光液：A:B1:1、放小黑屋里。剪好保鲜膜、铺在板上，做好准备。12.最后一次TBST洗完后，拿到小黑屋，关门、开红灯。13.先剪X光片、右上角做个记号（位置看个人习惯），14.将膜上的液体吸干（卫生纸上稍微吸干），放板上，定一