实验六呼吸运动的调节

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1、实验六家兔呼吸运动的调节实验目的掌握家兔耳缘静脉注射法家兔颈部手术操作、神经血管分离、气管插管技术记录家兔呼吸曲线观察血液中化学因素（CO2，O2和[H+]）及药物对呼吸运动的影响迷走神经对呼吸运动的调节了解各种因素影响呼吸运动的机制实验原理呼吸运动是受呼吸中枢控制的呼吸肌节律性活动，伴随着压力变化而使气体进出呼吸道。呼吸运动受神经以及血液中PO2，PCO2，[H+]等因素的调节。药物能作用于呼吸中枢而影响呼吸运动。肺牵张反射的传入神经是迷走神经，通过此反射弧完成正常地节律性呼吸。实验材料1、动物：家兔2、器械：动物手术器材（手术刀、手术剪、止血钳、玻璃分针,动脉夹，丝线，注射器，兔手术台），

2、气管插管，橡皮管（长1m以上，短10-20cm），体重秤，呼吸换能器（或张力换能器），生物信号处理系统等。3、药品和试剂：20%乌拉坦、3%乳酸、生理盐水等。实验方法一、仪器连接与标定二、称重、麻醉三、固定、剪毛四、颈部手术五、气管插管六、分离迷走神经七、腹部手术八、项目观察1、仪器的连接与标定换能器和微机记录系统的信号输入通道连接，刺激电极与刺激输出通道连接设定记录呼吸运动的参数水压计－－呼吸通道定标（已定标）捉拿：实验家兔多数饲养在笼内，所以抓取较为方便，一般以右手抓住兔颈部的毛皮提起，然后左手托其臀部或腹部，让其体重重量的大部分集中在左手上，这样就避免了抓取过程中的动物损伤。不能采用抓双

3、耳或抓提腹部。1、2、3均为不正确的抓取方法（1．可损伤两肾，2．可造成皮下出血，3．可伤两耳），4、5为正确的抓取方法。颈后部的皮厚可以抓，并用手托兔体。2、捉拿、称重、麻醉称重、麻醉麻醉兔耳缘静脉注射：20%氨基甲酸乙酯（1）注射液剂量5ml/kg体重，根据动物状态调整剂量，每次增加10%左右抽吸麻醉液时先取下针头，多吸一部分，排出气泡；（2）进针—注射姿势调整选择耳缘静脉，用酒精刺激后血管较粗；按压住血管根部，血管鼓起再进针，比较容易从远心端开始；循序向根部移动，每次移动距离不要太大，以免注射不成功或加药时无法注射。左右耳针头扎进1/3至1/2，并用拇指固定住，以免兔挣扎时退出。注射时推

4、动液体先快后慢（前1/3快，后面慢慢推进）—随时观察动物状态。剩余麻醉液需回收；兔耳缘静脉注射时的注意事项麻醉前应正确选用麻醉药品、用药剂量及给药途径；进行静脉麻醉时，先将总用药量的三分之一快速注入，使动物迅速渡过兴奋期，余下的三分之二量则应缓慢注射，并密切观察动物麻醉状态及反应，以便准确判断麻醉深度；如麻醉较浅，动物出现挣扎或呼吸急促等，需补充麻醉药以维持适当的麻醉。一次补充药量不宜超过原总用药量的五分之一；麻醉过程中，应随时保持呼吸道通畅，并注意保温；麻醉效果的观察呼吸：深慢而平稳角膜反射：明显迟钝肌张力：全身肌肉松弛皮肤夹捏反射消失。3.家兔固定和剪毛固定用细绳—回收固定头部要点：门牙—

5、拉直以使颈部挺起，便于手术剪毛：剪刀贴住皮肤剪毛；提起毛再剪，易剪破皮肤4.颈部手术颈部正中切口—分离软组织—暴露气管—钝性分离双侧迷走神经—各自穿2根丝线备用钝性分离气管，底下穿棉线备用气管倒T形切口，插入Y形气管插管，棉线固定手术刀割开皮肤一手绷紧皮肤，另一手用力一次性割开皮肤分离软组织用剪刀、镊子分离出气管除净气管外表的结缔组织等棉花条清除气管内的淤血、粘液等穿线备用5.气管插管气管插管术示意图-示气管切口环状软骨下1cm,做倒T型切口气管插管术示意图-示固定插管将三通管向肺方向插入，固定6.分离神经由里向外翻出气管一侧组织——颈动脉鞘：粗—迷走神经中—交感神经细—减压神经神经分离示意图

6、神经分离示意图-示迷走神经7、腹部手术切开胸骨下端剑突部位的皮肤，再沿腹白线切开长约2ml的切口。细心分离表面的组织（勿伤及胸骨），暴露出剑突与骨柄（注意不要伤害膈肌）。2、将系有长线的金属钩钩住或用线系住胸骨柄，线的另一端接张力换能器。连接实验装置选实验项目：呼吸运动的调节8、观察正常呼吸曲线⒈正常呼吸曲线的频率和幅度7.观察呼吸运动的影响因素1.增加无效腔（观察呼吸频率和幅度变化）2.窒息：夹闭两侧气管软管（几秒到几十秒，时间不要太长，否则会引起窒息死亡）（观察呼吸频率和幅度变化）3.吸入CO2：肺活量较大的同学呼出的CO2，10s以上吹气（不要对着软管直接吹，用手捧住软管，相对密闭，吹气

7、）。（观察呼吸频率和幅度变化）4.吸气末吹气，呼气末抽气。5.静脉内注入3％乳酸2ml（观察呼吸频率和幅度变化）6.切断右侧迷走神经，观察呼吸频率和幅度。再切断左侧迷走神经，观察呼吸频率和幅度变化。连续电脉冲刺激迷走神经中枢端（靠近头部的一端），观察呼吸频率和幅度变化。实验结果“呼吸运动调节”实验分析实验项目呼吸运动预期结果分析要点增加吸入气中的[CO2]加深加快1）血中[CO2]CO2经血脑