WB实验基本步骤

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1、实验基本步骤提取细胞蛋白↓BCA定量↓制备蛋白胶(SDS-PAGE胶)↓蛋白样品变性↓电泳↓转膜↓封闭↓一抗↓TBST洗涤↓二抗↓TBST洗涤↓显影↓结果分析试剂配制1.PBS磷酸盐缓冲溶液1L磷酸二氢钾0.24g磷酸氢二钠1.44g氯化钠8g氯化钾0.2g加入500ml纯水,调PH=7.2定容至1L,高压蒸汽灭菌2.PBST(PBS+0.05%吐温-20)500mlPBS+0.25ml吐温-203.电转液500mlTris1.5g甘氨酸7.2g400ml水溶解加入100ml甲醇,置于4℃冰箱预冷4.电泳液(1X)10x稀释,50

2、ml10x电泳液+450ml纯水5.TBS6.TBST(TBS+0.05%吐温-20)50mlTBS+450ml纯水+0.25ml吐温-207.封闭液TBST1X+5%奶粉40ml封闭液=40mlTBST+2g奶粉,40℃预热WB实验一、蛋白样品制备准备:一管细胞,PBS(4℃预冷),PMSF(100mM),移液枪(1000ul,10ul),1.5mlEP管2个,高速冷冻离心机4℃预冷1.于-20℃冰箱中取出一管细胞样品,吸去培养液2.加入1ml4℃预冷的PBS(0.01MpH7.2~7.3)。用移液枪轻轻吹成悬浮液后4℃,800

3、0r离心5min,然后弃去上清。重复以上操作一次,共洗细胞两次以洗去培养液。3.按1ml裂解液加10μlPMSF(100mM),摇匀置于冰上。(PMSF要摇匀至无结晶时才可与裂解液混合。)4.在样品中加入300ul含PMSF的裂解液,吹匀,于冰上裂解30min,为使细胞充分裂解培养瓶要经常来回摇动。5.裂解完后,于4℃下12000rpm离心5min。7.将离心后的上清分装转移倒0.5ml的离心管中放于-20℃保存。二、蛋白含量的测定(BCA定量)准备:96孔板,移液枪(1000ul,10ul,200ul),BCA工作液(A+B),

4、50mlEP管,1xPBS,BSA标准液1.将96孔板分好区域,若不够分则只做两个重复,(外围一圈的孔最好不用)2.算好孔数(总的)每孔加200ulBCA工作液(A+B),(A液:B液=50:1,一般配多些,如60孔,A液12000ul,B液240ul)3.将样品稀释到一定倍数才能定量,(10倍,20倍,30倍),每孔需要20ul样品(2ul样品+18ulPBS,即稀释10倍),做三个重复则需要60ul,一般配80ul4.配蛋白标准样品,将2mg/ml的蛋白标准溶液稀释至0.5mg/ml,若配200ul的0.5mg/ml蛋白标准溶

5、液则需要50ul的2mg/ml的蛋白标准溶液和150ulPBS溶液5.将稀释好的样品加入孔板中(标记的区域),接着标准品按0,1,2,4,8,12,16,20ul加到标号的区域,之后在加标准样品的孔内,将孔内溶液用PBS补足到20ul6.每孔加200ul配好的工作液,平行加,不能上下加,以减少误差7.将加好的96孔板放在37℃下孵育30分钟8.孵育完后,放在酶标仪轻微震荡3-10s,中速,吸光值595nm,进行比色测定,记录标准曲线及样品吸光值数据后,以蛋白含量(ml)为横坐标,吸光值为纵坐标作标准曲线。(R2>0.98才有用,酶

6、标仪操作:两个箭头图标,1是结果,2是保存)9.计算蛋白含量(注意定量样品已经稀释了10倍)蛋白质定量标准曲线加样量序号12345678标准蛋白量/ul(0.5mg/ml)01248121620背景液(PBS)/ul2019181612840标准液浓度mg/ml00.0250.050.10.20.30.40.5三、SDS-PAGE电泳 1. 配胶(12%,可以提前配好)准备:玻璃板,梳子,AP(解冻,现拿现用),聚丙烯酰胺(4℃冰箱冷藏)(1)玻璃板验漏5min(2)按表配置分离胶(3)灌胶,加酒精封压,凝30min(注意不要有气

7、泡)(4)按表配浓缩胶,倒掉酒精,用吸水纸吸去酒精,灌胶,插梳子(注意不要有气泡),凝30min(5)取胶,用水冲洗一下浓缩胶,加少量水放入一次性手套中4℃冰箱保存备用2.样品处理准备:PBS,移液枪,1.5mlEP管(1)稀释样品:一般每孔上样5ul,即1mg/ml浓度的样品,测完蛋白含量后,将样品用PBS稀释至1mg/ml(注意loadingbuffer的加入也得算入)(2)取出上样样品15ul至1.5ml离心管中,加入6×SDS上样缓冲液3ul至终浓度为1×。(上样总体积一般不超过15μl,加样孔的最大限度可加20μl样品。

8、)(3)将样品在100℃煮5min震荡使蛋白完全变性(注意仪器操作)3. 电泳准备:电泳液500ml(现配),蛋白胶,10ul移液枪(枪头),样品,Marker,冰盒,电泳装置(1)将SDS-PAGE胶放入电泳槽中,加足够的电泳液。(短玻璃板面向内

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