细菌产淀粉酶菌种分离与分子鉴定

细菌产淀粉酶菌种分离与分子鉴定

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时间:2019-06-19

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1、细菌产淀粉菌种分离与分子鉴定摘要:淀粉酶是水解淀粉和糖原的酶类总称,具有重要的经济利用价值。本实验意在筛选产淀粉酶菌种,并进行16SrDNA的分子鉴定。通过分离纯化rRNA进行测序,最终在数据库中查找确定所属类别。关键字:枯草芽孢杆菌;rRNA;PCR法;序列测定1引言土壤中含有各种微生物,其中包含淀粉酶的枯草芽孢杆菌。在淀粉作为唯一碳源的鉴别培养基中,只有能产生淀粉酶利用淀粉的菌体才能成为优势菌种。在含淀粉作为唯一碳源的鉴别培养基上的平板上,具有产淀粉酶能力的枯草芽孢杆菌,水解淀粉生成小分子糊精和葡萄糖,在淀粉平板上菌落周围出现水

2、解圈,但肉眼不易分辨,滴加碘液,未水解的淀粉呈蓝色,若菌落周围能形成淀粉水解圈,表明该菌具有产淀粉酶的能力。对于淀粉酶产生菌的筛选分析,强调注意微生物的安全性,防止筛选到一些对人体有害的病原微生物。细菌中的核糖体RNA分为5SrRNA、16SrRNA、23SrRNA,其中16SrRNA相对分子质量适中。16SrDNA由可变区和恒定区组成,不同细菌的恒定区序列基本保守,而可变区序列因细菌而异,故可利用恒定区的序列设计引物将16SrDNA扩增出来,利用可变区序列的差异对不同的细菌进行分类。本文旨在筛选自然界中存在的淀粉酶产生菌,并对其1

3、6SrDNA进行序列分析得出菌的种属。2材料和方法2.1仪器与材料2.1.1材料淀粉厂周围土壤2.1.2培养基实验过程中所采用的培养基,自行配置。配置过程如下:1)产淀粉酶菌分离培养基——第5页共5页可溶性淀粉2%;蛋白胨1%;酵母膏0.5%;碳酸氢二钠0.5%;氯化钠0.01%;MgSO4·7H2O0.01%;琼脂粉2%。配置好后维持PH为7.0-7.4,121℃高压灭菌20min。2)菌体培养培养基——可溶性淀粉2%;蛋白胨2%;酵母膏0.5%;氯化钠0.01%;MgSO4·7H2O0.01%。配置好后维持PH为7.0-7.4,

4、121℃高压灭菌20min。2.1.3仪器高压灭菌锅、恒温培养箱、pH仪、恒温水浴锅、电子天平、锥形瓶、试管、平板、涂布器、玻璃珠、摇床、革兰氏阳性细菌DHA提取试剂盒、细菌16SrRNAPCR鉴定试剂盒、PCR纯化试剂盒、移液枪。2.2方法2.2.1细菌淀粉酶菌种的分离按照产淀粉酶菌分离培养基配方制备200ml培养基,121℃高压灭菌30min,无菌室倒平板。称取0.1g土壤,加入装有10ml蒸馏水的三角瓶中(已灭菌),震荡三角瓶分散菌体,后置于80℃水浴约15min。吸取0.5ml菌液加入到4.5ml蒸馏水当中混匀,得到10-1

5、浓度的菌液,以此类推制备10-2、10-3浓度梯度菌液。分别吸取梯度浓度菌液100微升,均匀涂布在产淀粉霉菌分离平板上,37℃培养箱培养24h,最后取出培养好的平皿,在长出的菌落上滴加碘液,菌落周围若有无色透明圈出现,说明淀粉被水解,即菌株能产生淀粉酶。将产透明圈的菌接种后,摇甁培养进行分子鉴定。将产透明圈的菌点接种到另一淀粉平板,培养后第二天检测透明圈和照相。2.2.2细菌的16SrDNA分子鉴定2.2.2.1革兰氏阳性菌基因组DNA的提取挑取分离的产淀粉酶单菌落接种到10ml发酵培养基中37℃震荡过夜培养,然后按照革兰氏阳性菌D

6、HA提取试剂盒指导提取细菌基因组DHA。经过琼脂糖凝胶电泳确认细菌的基因组DNA,控制电压在60-80V,电泳时间在45-60min,Marker为100bpLadderDNAMarker,由11种长度在100bp至2000bp的DNA片段组成。第5页共5页2.2.2.2PCR扩增细菌16SrDNA基因片段并纯化按照TaKaRa宝生物工程大连有限公司细菌16SrDNA菌种鉴定试剂盒说明书进行,对16SrDNA基因片段进行PCR扩增。使用1%的琼脂糖凝胶进行PCR产物电泳检测,确认PCR扩增细菌保守基因16SrDNA基因片段。最后按照

7、Omega公司提供的PCR产物纯化试剂盒指导进行PCR产物的纯化,并将纯化产物送至测序公司进行测序。根据所测序列在NCBI数据库中进行同源性对比,所测序序列与数据库中已有的菌种16SrDNAPCR的相似度达99%以上,判断分离菌种属并确定微生物在进化中的位置。3结果与讨论3.1细菌淀粉酶菌种的分离分析图3-1产淀粉酶菌种分离图3.2细菌的16SrDNA分子鉴定分析1)第5页共5页图3-2DNA提取后检测电泳图谱2)图3-3PCR扩增细菌16SrDNA基因片段电泳图谱3)图3-4PCR纯化结果电泳图谱4)16SrDNA可变区序列的测定

8、结果:第5页共5页GGGCCATGCTAGCAGCTATAGTGTGAGTCTGAGCGCGACAGATGGGAGCTTGCTCCCTGATGTTAGCGGCGGACGGGTGAGTAACACGTGGGTAACCTGCCTGTAAGA

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