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时间:2019-06-16
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1、大肠杆菌(E.coli)超级感受态细胞制备H.Inoue,H.Nojima,andH.Okayama(1990)HighefficiencytransformationofEscherichiacoliwithplasmids.Gene96:23-28溶液:SOB培养基1L500ml10002%Bactotryptone20g10g0.5%yeastexctract5g2.5g10mMNaCl0.6g/L0.3g2.5mmKCl0.18g/L250mM5ml10ml10mMMgCl22.03g/l..6H2O2M2.5ml5ml10mMMg
2、SO42.46g/l..7H2O1M10ml20ml培养细菌用。TBbuffer(transformationbuffer):10mMHepes(orPipes)2.5g/lHepes15mMCaCl22.27g/l(.2H2O)250mMKCl18.6g/l55mMMnCl210g/l除MnCl2外,所有组分以固体加水中溶解和搅拌混匀,并以KOH调pH6.7,再将MnCl2溶解上述溶液中,用0.45μm滤膜抽滤除菌,存放于4℃备用。4℃预冷所需的器皿:离心机转子、移液管、枪尖和eppendorf管。步骤:1,取5mlSOB加到100ml的
3、小烧瓶中,从新培养的平板上接种一个单克隆。过夜培养。2,在一个2L的烧瓶中加200mlSOB,接种预培养的菌液1ml。在18℃,置于摇床剧烈振荡(200-250rpm)培养至OD660=0.6,大约需要1.5-2天。(注:下面所有处理应该在低温下操作)3,将培养物和低温离心管放置冰中,10min,将培养物转到预冷的离心管中。4,离心收集:4℃、3000rpm、10min。去上清,倒置于面纸上。加原体积1/3(17ml)的冷的TBbuffer,冰上冷浴10min。5,离心收集:4℃、3000rpm,10min。去上清,倒置于面纸上。小心地将细
4、胞重新悬浮于原体积1/12(4ml)的冷TBbuffer。再加DMSO280μl,轻旋振,置冰上10min。6,分装细胞悬浮液,每200μl为单位加到预冷的eppendorf管中,立刻放于液氮中冷冻。67,取出,存放于-80℃。至少可存放1个月而无明显的效率下降。备注:1,感受态细胞脆弱易碎,其细胞壁具缝,因此在准备中需要轻柔操作,不可剧烈振荡或以移液管吸取吹打来悬浮细胞。离心时也不可转速过大,5000g可以引起细胞裂解。2,制备过程中,总是保持细胞低温冷却,不能使温度上升。3,液氮冷冻可以使感受态细胞转化效率明显高一些。5,此法不适于BL
5、21菌株,因此用BL21菌株制备感受态细胞时的培养温度应该是30或37度。有证据显示,以Inoue方法制作的感受态效率可以用下面的处理得以提高:在冷冻之前,用DTT加以处理(加3.5%v/v2.2MDTT,10mMKAcpH6溶液,然后置于冰冷浴10min)。6,热休克时间因菌株而异。DH5α或JM109取30-45sec,而BL21取120sec。7,在转化前,要降低连接酶的活性。连接酶可以降低转化效率。8,稀释连接体系的浓度(-5x)也可以提高转化效率,因为降低了可能影响转化的试剂的浓度。同样,建议苯酚/氯仿处理,也可以提高转化效率,但
6、是会使得步骤繁琐。9,所加DNA不得多于感受态细胞量的5%,其终浓度不得超过5ng/ul。10,上述方法可产生的转化效率达到1μgpUC质粒转化到108个单克隆,甚至109。11,转化效率与质粒大小有个粗略的反比例关系。具有deoR突变基因的细胞(DH5α)可以提高对于大质粒的转化效率,非严谨质粒转化效率约为超螺旋的3/4左右。12,可以同时用两个不同的质粒来做转化,或先后转化。但他们必须是兼容的,不能具有相同的复制子。13,对于常规的转化,转化效率并不重要,某些步骤可以简化或省略。如热休克就不是必需的,37度恢复孵育时间就可以缩短或省略
7、(注:这依赖于用来筛选所用的抗生素,如氨苄青霉素,孵育时间就无所谓了,如果乐意就可以在热休克后直接涂平板;但对于别的抗生素而言,孵育时间是基本步骤)。14,细胞涂布平板于干的1.5%琼脂糖平板,使用前先将之倒置放于37度2-4hr晾干,使得可以吸收1ml左右液体培养基。对于蓝-白斑筛选,不必制作X-gal平板,就直接加X-gal+IPTG到细胞中混匀了再涂布平板。15,去污剂会损害感受态细胞的转化率,所以用来制作感受态细胞的玻璃器皿等不能用去污剂洗涤。聚碳酸酯烧瓶也可以用来代替玻璃瓶,DMSO会溶解聚苯乙烯,所以使用聚丙烯管子。16,如果克
8、隆困难,只有不稳定的测序结果(如回文序列、重复片段。LTR序列),它将有助于生长出转化子,在较低温度下(25-30度或室温)在非常丰富的培养基中(如TerrificBroth)。
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