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1、2发热模型 动物发热模型的建立方法有很多种，最常见的主要是采用向动物体内注入脂多糖(LPS)、2,4二硝基酚和酵母菌的方法制作发热模型。 2.1脂多糖(1ipopo1ysaccharide，LPS)诱导的发热模型 LPS是革兰阴性细菌内毒的活性成分，LPS有高度水溶性，是效应很强的细菌致热源。LPS由3个成分组成,最外层为特异性多糖,即菌体多糖,它是由几个单糖组成的许多个同样的重复单位连接而成,与细菌的侵袭力有关;中间是核心多糖(同一种属之间是相同的);内层是类脂A,它是一种特殊的糖磷脂,主要起毒性作用而无种属特异性[10]。其诱导的发热表现为双相热或三相热,并伴有寒颤、精
2、神萎靡和轻微腹泻等症状,与临床感染性炎症所致发热相似,是经典的炎性发热模型,常用于筛选解热药物并探讨炎性发热机制。因为该模型具有自限性和耐受性,如在用于中药解热药效(一般起效较慢)的研究时，应在用LPS诱导发热之前即开始给药。LPS诱导发热模型所用的剂量范围较大,从10～250μg/kg不等,其中较为常用的剂量是10μg/kg、20μg/kg、100μg/kg。在探索LPS诱导大鼠发热的最佳剂量时,发现引起实验大鼠发热热势高、持续时间长的LPS剂量为20μg/kg[11]。 LPS诱导的大鼠发热模型的具体操作方法是先每日测量大鼠体温(肛温)2次,连续2日,取2次体温的平均值记为基
3、础体温。单次体温超过38℃或2次体温差超过0.5℃的动物剔除。实验前6h禁食不禁水。然后腹腔注射LPS(20μg/kg或80μg/kg),诱发动物发热,注射LPS后每隔0.5h测1次体温,连续监测8h。 2.22,4-二硝基酚诱导的发热模型 2,4-二硝基酚可刺激细胞氧化过程，抑制磷酰化过程，使氧化过程受到刺激所增加的能量不能通过磷酰化转变为三磷酸腺苷或磷酸肌酸的形式贮存而以热能散发，引起发热。2,4二硝基酚用于制作动物发热模型时，所使用的实验动物多为大鼠或家兔。有实验表明[12]，2,4二硝基酚诱导的发热模型升温后持续时间较短,大约1h左右,所以不适用于作用缓慢而持久的解
4、热药物解热作用的考察，但对于作用快速且强大的药物,实验结果满意。 2,4二硝基酚诱导的大鼠发热模型的具体操作方法[13]：致热前用肛温计测量大鼠直肠温度1次，连续3d，取其平均值作为正常基础体温。测量时将大鼠仰位固定于鼠板上，待其稳定后，在肛温计顶端涂少许凡士林油，轻缓送入肛门2cm，放置3min后取出读数。选正常体温在36.6～38.3℃的正常大鼠，然后在各鼠背部皮下注射2,4二硝基酚15mg/kg，每隔0.5h测量体温。 2.3酵母菌诱导的发热模型 酵母菌属真菌类,经高压或甲醛杀死的酵母细胞与活细胞一样也可引起发热,其致热成分是全菌体及菌体内所含的荚膜多糖和蛋白质。酵
5、母菌作用于机体后,可激活EP细胞产生和释放EP,后者作用于体温调节中枢,引起发热介质的释放,继而改变调定点。有研究表明[14]，酵母致大鼠发热与体温调节中枢发热介质5HT含量变化有关，下丘脑组织中5HT含量随体温的改变而改变。酵母菌所致的发热是由注射部位的局部溃烂引发的剧烈炎症反应导致，动物全身表现与临床伴内脏或皮肤有明显炎症的里热证类似，更适合考察清热药的解热作用。另有研究表明[15]，干酵母混悬液皮下注射于大鼠后,先引起动物体温下降,一段时间后动物体温明显升高,并持续较长时间,而且局部有明显炎症症状出现。 酵母菌诱导的大鼠发热模型的具体操作方法：将干酵母用生理盐水配成15
6、%的混悬液,按5mL/kg的剂量皮下注射给SD大鼠。在正式实验前1周,每天3次(早、中、晚各1次)对大鼠的直肠进行刺激。正式实验时,0.5h内测定大鼠体温3次,取其均值作为基础体温值,皮下注射干酵母混悬液后,每小时测体温1次。 2.4其他诱导的发热模型 在诱导的大鼠发热模型中，除了以上3种主要的模型外，还有一些其他模型，虽然使用不是那么的普遍，但在特定的实验、特定的情况中也有用到。 2.4.1角叉菜的致热模型角叉菜诱导发热模型的特点是致炎局部的前列腺素合成增加，并与血管活性物质和激肽类一起诱发水肿，常用于观察药物对急性炎症过程的影响，它是筛选发热抗炎药物的常规模型[16]。李
7、茂等在研究中发现舒感颗粒对角叉菜胶引起的大鼠发热具有一定的解热作用，流感病毒引起的发热有标本兼治的功效[17]。该方法造模导致的发热常常以局部急性炎症为主要表现，因此一般用于致炎实验，而鲜用于制作发热模型。 2.4.2注射杀死的大肠杆菌或乙型副伤寒杆菌培养液将在30～37℃培养3～4周的大肠杆菌肉汤培养液或培养3～4昼夜的乙型副伤寒杆菌肉汤培养液，以细菌滤过器过滤。把留在滤器上的细菌剩余物放入盛有甘油1～2mL的研钵中研碎，高压灭菌。取该混悬液0.2mL，以过滤液(
