《电镜超薄切》PPT课件

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1、电子显微术图1日立H-7500,H-7600图JEM-2100F日本电子图4Sirion场发射扫描电子显微镜一、电子显微镜的发展史1、光学显微镜的极限光学显微镜的分辨本领大约是可见波长的一半,可见波长为400--800nm,所以光学显微镜的分辨本领大约是0.2um。2、1924年,法国科学家德.布罗意证明了任何一种快速运动的粒子,都具有波动性。1926年德国科学家布许发现,高速运动的电子在电场或磁场下,会发生折射,并且能被聚焦。高速运动的电子具有波动性和折射性是电子显微镜的基础。20世纪30年代,

2、经过鲁斯卡、克诺尔、马顿等科学家的不懈努力,终于在1938年试制成功第一台实用电子显微镜。20世纪30年代电子显微镜问世,60年代电镜技术和生物样本制备技术获得进展。后发展了扫描电镜术、冷冻复型术、高压电镜术、X线显微分析术、扫描隧道显微术和原子力显微术等。二、电镜的应用:正常结构;病理诊断;病原;化学;考古。第一节、透射电子显微术一、透射电镜的原理1高速运动的并具有波动性和折射性的电子2电镜的各种像差1)球差:是由于透镜不能把所有的入射光线聚集共同的焦点而产生的。2)像散:这一缺陷主要是由于电子

3、透镜实际上不可能做得完全对称。3)色差:可见光的波长不同。4)畸变:在低倍镜时经常发生.因为图像中心部分和周边部分的放大倍数不同.二、透射电子显微镜的结构1电子枪2聚光镜系统3样品室4成象系统:物镜、第一中间镜、第二中间镜、投影镜。5观察和记录系统三、透射电镜的使用1加速电压的选择:40-100kV可以一档一档的调节。加速电压对电镜的性能有以下的影响:一般样品薄时40-60KV,一般样品60-80KV,厚时100KV。1)电压越高,电子穿透能力越强;2)对于某些生物制品,电压越高,图象反差越小;3

4、)电压升高电子枪亮度增加,荧光屏亮度也增加;4)电压升高对提高分辨率有利。2聚光镜光阑和物镜光阑的选择聚光镜光阑:200-300um;物镜光阑:20-70um.3放大倍数的选择选择放大倍数的两个原则:①感兴趣的区域充满整个照相底片;②感兴趣的细节特征十分容易测到。4.选视野、调焦和拍照(1)把要拍照的视野移至屏中心6×9黑框内。(2)用OBFOCUS调焦,拍照前使OB置于稍欠焦位置上以增加反差。(3)核对是否存有像散,核对光斑是否居中,核对灯丝是否饱和对称。(4)根据事先已在计算机上设定好的最佳光

5、强度,调节BRIGHTNESS,使PAG1上的EXPTIME为设定值(参考第三章)。(5)盖上观察窗,按下PHOTO,即自动曝光。透射电子显微镜生物制品制备技术Thephotooflightmicroscope冷冻蚀刻法超薄切片冰冻蚀刻复型术冰冻割断术FreezeetchreplicaFreezecracking电镜细胞化学术electronmicroscopecytochemistry免疫组织化学技术免疫电镜术ImmunohistochemistryImmunoelectronmicroscop

6、y电镜放射自显影术显微放射自显影技术ElectronmicroscopeAutoradiographyMicroautoradiography扫描电镜技术ScanningelectronmicroscopySEM被吞噬的红细胞现有的透射电镜生物制品制备技术分为两类:一类是透射电镜的基本制备技术,包括超薄切片和负染色法;另一类是生物制品的特殊技术,其中包括冷冻蚀刻法、冰冻割断术、电镜细胞化学术 、免疫电镜术、电镜放射自显影技术、X线微区分析技术等。1、超薄切片样品的制备(1)取材(基本要求是在活体情

7、况下进行)取材的原则(快、准、轻、小、冷的原则)1)快速:1分钟之内投入固定液。2)块小:0.5-1mm3或截面1mm2的长条。3)部位准4)损伤小:器械应锐利,避免牵拉、挤压,防止组织受机械损伤。5)低温:0-4oC取材的方法1)动物材料:对神经组织等要进行原位固定或灌注固定,待组织适当硬化后再取材。胚胎干细胞的研究2)培养细胞(Cellculture):生长在瓶中的细胞到足够的量,先倒去培养液,然后倒入适量的戊二醛固定液,在冰浴下3-5分钟、弯头吸管吹打或用软器械轻轻地刮下贴壁的细胞,将这种混

8、合液倒入离心管中,2000rpm低速离心15-20分钟,使细胞呈团,弃去上清液,换一次固定液,将其移入修块台,修快成标准块4oC固定、待用。3)单细胞悬液:精子、血球等其他不易聚集的悬浮游离材料,可加入等量的戊二醛和其他类型的固定液,轻轻地把他们悬浮在固定液中。经过固定处理后再离心成团,在50oC中弃去上清液,加入适量的经50oC预温的2%的琼浆,使团悬浮,将悬浮团和琼脂液一同在薄片上展层,固定后切成1mm3的小块。(2)固定(fixation)Theaimistoavoiddig

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