肢体缺血再灌注时大鼠肠系膜微循环的变化

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1、豫循环学杂志，2010，20(1)：32～34⑥2010CHINESEJOURNALOFMICROC1RCULATION肢体缺血再灌注时大鼠肠系膜微循环的变化赵霞董淑云张连元[中图分类号]R331[文献标识码]A[文章编号]1005—1740(2010)01—0032—03实验大鼠于术前12h禁食，自由饮水。参照文圜萎蠢妻童献lI3方法制作大鼠LIR模型：于大鼠双后肢根部用止血带结扎，完全阻断血流；缺血4h后松开止血带，恢复双后肢血液灌流。将实验大鼠随机均分为6组(均一10)：非缺血对照组(Control组)：模拟性肢体松绕止血带但不结扎；单纯缺血4h组(I组)：结

2、扎双后肢缺血4h；缺血再灌20min(IR20组)、60min(IR60组)、120min(IR120组)、200min(IR200组)，观察和记录再灌各组各时间点的肠系膜微循环改变。分别于上述各时间点自大鼠腹主动脉放血处死动物，留取部分血液用作检测血浆PGI。、TXA。含量。1．4微循环观测指标和方法在观察肠系膜微循环前10min自腹腔注入2O乌拉坦(5ml／kg)麻醉，沿大鼠腹部右侧作一纵行切口，打开腹腔，轻轻拉出一段小肠肠袢，固定于微循环显微镜载物台的恒温(37℃)灌流盒上；将微循环显微镜与图像分析系统连接，观察和记录各组大鼠肠系膜微循环变化。肠系膜微循环指标

3、包括微动脉管径(AD)、微静脉管径(VD)、微动脉流速(AFV)、微静脉流速(VFV)、白细胞黏附数、白微栓数。微1材料与方法血管管径测定采用显微电视法：取血管走行较直段，1．1实验动物与血管纵轴垂直方向测血管直径3次，取平均值]。健康雄性Wistar大鼠，体重250±20g，购自河微循环血流速度测定采用光点同步扫描法j。白细南医科大学实验动物中心(医动字D410116号)。胞粘附数测定以100fm长微静脉内皮上粘附而不自由饮水、进食，室温(25±2。C)中分笼饲养。滚动超过30s的白细胞定义为粘附的白细胞]。白1．2主要仪器和试剂微栓计数以每分钟通过某一血管横截面

4、的白微栓个OlympusBH一2微循环显微镜、BI一2000医学图数表示。像分析系统(成都泰盟科技有限公司)。PGI：、1．5血浆PGIz和TXA2检查TXA放免检测试剂盒(解放军总医院放免所)。以放射免疫法测定各组大鼠血浆PGI的稳定1．3LIR大鼠模型及分组代谢产物6一酮一前列环素Fla(6-Keto—PGF1a)含量以及TXA。的稳定代谢产物血栓烷B。(TXBz)的含量，并计算二者比值(6-Keto—PGF1a／TXBz)，以反[作者单位]华北煤炭医学院病理生理学教研室，邮政编码唐映PGI、TXA。水平及PGI。／TXAz比值。山063000；通讯作者：张连元

5、，E—mail：asihappy@126．corn1．6统计学处理本文2009—11—23收到，200912—15修回，2009—12—18接受计量资料用均数±标准差(±)表示，多组比循Ⅲ田I学杂志基础与实验2010年第20卷第1期肢体缺血再灌注时大鼠肠系膜微循环的变化33较采用方差分析(One—WayANOVA方法)，两组间(1)微血管管径：与Control组(图1A)比较，I比较采用t检验；计数资料采用Kruskal—Wallis—组无显著性变化(P>0．05)(图1B)，IR20组、IR60Test，非参数检验；P<0．05为差异具有显著性意组依次缩小(P<0

6、．O1或P<0．05)(图1C、D)，义。所有统计分析均用SPSS13．0软件完成。IR12O组、IR200组依次扩大(P<0．01)(图1E、F)。(2)微血流速度：与Control组比较，I组无显著2结果性变化(P>0．05)，IR20组、IR60组、IR12O组、2．1各组大鼠肠系膜微血管管径和血流速度比较IR200组依次减慢(P<0．01或P<0．05)。见表1。表1各组大鼠LIR时肠系膜微血管管径和血流速度的变化(±，”均一10)注：与对照组比较，”P

7、IR60组比较，。P