western blot操作规范

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1、-Westernblot操作流程1.样品的准备a收集蛋白样品(Proteinsamplepreparation)    可以使用适当的裂解液，裂解贴壁细胞、悬浮细胞或组织样品。对于某些特定的亚细胞组份蛋白，例如细胞核蛋白、细胞浆蛋白、线粒体蛋白等，可以参考相关文献提取这些亚细胞组份蛋白，也可以使用相应的蛋白抽提试剂盒进行抽提。    收集完蛋白样品后，为确保每个蛋白样品的上样量一致，需要测定每个蛋白样品的蛋白浓度。根据所使用的裂解液的不同，需要采用适当的蛋白浓度测定方法。因为不同的蛋白浓度测定方法对于一些去垢剂和还原剂等的兼容性差别很大。如果使用碧云天生产的Western及

2、IP细胞裂解液或RIPA裂解液，可以使用BCA蛋白浓度测定试剂盒。b样品处理    在收集的蛋白样品中加入适量浓缩的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液。例如2×或5×的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液。使用5×的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液可以减小上样体积，在相同体积的上样孔内可以上样更多的蛋白样品。5×的SDS-PAGE蛋白上样缓冲液的配置    100℃或沸水浴加热3-5分钟，以充分变性蛋白。如果不立即电泳，样品可放置于-20℃或者-80℃保存。2.SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)a准备SDS-PAGE凝胶[1].按产品说明将制胶玻璃板装配到制胶器上。(注意一定

3、要将玻璃板洗净，最后用ddH2O冲洗一遍，晾干)[2].装配好后，可加水检查是否密封，防止漏胶。[3].根据表1确定凝胶浓度体积，按表3配制分离胶溶液。按表中成分顺序加入烧杯配制。[4].小心将分离胶注入准备好的玻璃板间隙中，灌到足够高度。注意：为浓缩胶留有足够空间（分离胶面距加样孔底1cm，即梳齿长再加1cm。）。[5].轻轻在顶层加入几毫升覆盖物（无水乙醇、去离子水或正丁醇），以阻止空气氧对凝胶聚合的抑制作用。[6].凝胶充分聚合。时间约30~60min,聚合后在覆盖层和凝胶的界面间有一清晰的折光线。[7].倒掉覆盖层，用无离子水洗凝胶上部数次，尽可能用吸水纸吸干凝胶顶

4、端的残存的液体。[8].按表2配制浓缩胶，并注入分离胶上端。插入梳子。插入梳子子应小心避免梳子顶端留有气泡。[9].浓缩胶充分聚合，时间30~60min。[10].浓缩胶聚合好后，将制胶装置从基座上取下，放入电泳槽。[11].上下槽均加入新鲜Tris-甘氨酸电泳缓冲液（至少负极槽使用新鲜电泳缓冲液）。[12].小心拔出梳子，若孔间隔离凝胶条倾斜，用小号注射器针头扶正。[13].用电泳缓冲液冲洗梳孔。---b上样与电泳    将蛋白样品解冻后直接上样到SDS-PAGE胶加样孔内即可。按照一定顺序在加样孔中加入样品，根据SDS-PAGE电泳玻璃板间隙厚度不同，选择加入样品量，一

5、般0.75mm间隙15孔的上样量<10μl/孔，1mm间隙10孔的上样量<20μl/孔。上样量根据实际经验自己掌握。1.上样前将胶板下的气泡赶走。2.所有蛋白样品调至等浓度后上样，最外两泳道易跑歪，尽量不用，Marker加在最边上的加样孔中。3.电泳时通常推荐在上层胶时使用低电压恒压电泳,电压设定为50V左右，而在溴酚蓝进入分离胶时使用高电压恒压电泳，电压设定为120V左右。电泳过程中最好设置定时时间，以免电泳过头。4.在目的蛋白泳动至距胶下缘1cm以上结束。或者可以根据预染蛋白质分子量标准的电泳情况，预计目的蛋白已经被适当分离后即可停止电泳。3.转膜（槽转印）卸下电泳装置

6、，用绿色的塑料片轻轻撬开玻璃板，用塑料铲或者干净的刀片小心切去浓缩胶，保留分离胶，在分离胶左上切角（以区分胶的上下）为避免污染，请佩戴手套接触凝胶、印迹膜和滤纸1.相对于每一张凝胶，需要按尺寸裁剪出一张PVDF膜（5.5cm×8.5cm）、两张滤纸（6.5cm×10cm）。将切好的PVDF膜浸入甲醇中不少于15min才可以使用。2.在加有转移液的搪瓷盘里放入转印夹、两块纤维衬垫、滤纸（2张超厚滤纸或者6张普通滤纸）和浸泡过的PVDF膜。3.打开转印夹将黑色的一面浸入转膜缓冲液中，从下往上依次放入纤维衬垫、滤纸、分离胶、PVDF膜、滤纸、海绵。注意：整个过程在转膜缓冲液中进行

7、。在铺每一层时都要用玻璃棒轻轻赶走气泡，尤其是胶和膜之间一定不能留有气泡。4.将转印夹合好，放到转印槽中，要使转印夹的黑面对着转印槽的黑面，转印夹的红面对着转印槽的红面。转印槽通电后会产热，在转印槽有较大空隙的一边放入冰盒（事先置于-80℃）用来降温。将整个电泳槽放入一个大的容器中（大的塑料泡沫盒子最好），在这个容器中盛满冰。接通电源，设定转膜电流为300mA，转印30min~60min（目的蛋白的分子量越大，需要的转膜时间越长）。5.关闭电源，取出膜，然后用ddH2O漂洗1~2min。注意膜上要做好标记。4.封闭