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1、10111910224曹晓丹10111910225倪苗周二上午大豆萌发过程中真叶的生理变化摘要:种子的萌发过程中会发生一系列的生命活动,各种酶开始活化,呼吸和代谢作用急剧增强,蛋白质、糖类和可溶性物质的含量都会发生巨大的变化,子叶是发育前期的营养主要消耗的部位,当种子发芽的时候,所有生命活动都要动员这部分储藏的能量,当子叶中能量不足以提供生命活动时,真叶必须进行光合作用才能维持生命。这个时刻开始,子叶能量的变化与真叶积累能量的能力也许会产生一个函数关系的变化,本实验通过测定子叶和第一片可溶性糖的含量以及第一片真叶的可溶性糖、电导率、叶绿素含量和叶绿素荧

2、光,经过对比分析希望可以探究出可溶性糖的减少量和光合速率的增加量之间的数学关系,并且通过对第一片真叶的可溶性糖、电导率、叶绿素含量和叶绿素荧光的测定,了解大豆萌发过程中真叶的生理变化。实验材料:270颗大豆实验器材:生理指标实验器材用途数量可溶性还原糖含量分析天平称量1个容量瓶用来定容2个(50ml,100ml各一个)水浴锅水浴加热1个试剂瓶装试剂5个量筒量取液体2个(100ml5ml)分光光度计测光密度1个比色杯测光密度8个刻度试管11支用于测定标准曲线,3支用于可溶性糖的提取14个(20ml的)记号笔在试管标签上做记号1支吸水纸吸水适量试管夹夹试

3、管1个塑料薄膜密封适量电导率滤纸吸水适量电导仪用电导仪测定浸提液电导1个抽真空注射器抽真空,使叶子沉入水底1个烧杯配制溶液4个50ml的1个,100ml的1个,250ml的1个,1000ml的1个)移液管吸取液体试剂3个(0.5ml,5ml,10ml的各一个)剪刀剪叶片1个镊子捏取叶片1个试管架放试管1个玻璃棒搅拌1个铁架台固定1个胶头滴管加少量试剂2个标签标记适量叶绿素含量手持叶绿素含量测定仪测叶绿素含量1个叶绿素荧光叶绿素荧光测定仪测叶片的光化和效率1个种植大豆花盆种植大豆30个瓷盘种植大豆1个实验试剂: 名称重量/g用途苯酚90配制100ml90

4、%的苯酚溶液98%浓硫酸400ml纯蔗糖2配制 1 %蔗糖标准液石英砂15研磨实验方法:1.材料的种植:水培法。2.可溶性糖含量测定:苯酚法。3.电导率的测定:抽气法。4.叶绿素含量的测定:叶绿素测定仪。5.叶绿素荧光测定:叶绿素荧光测定仪。实验步骤:一、材料的处理与取材时间:种植方法:1.选种将经过太阳暴晒的大豆种子用75%的酒精中浸泡30-60秒,用蒸馏水反复洗涤。然后将消毒处理后得到的大豆种子浸泡于温水中12小时,从中挑选颗粒饱满的种子进行萌发。(备注:a.蒸馏水洗涤3-5次即可)2.萌发按照萌发容器(培养皿、瓷盘)大小把纱布裁剪三层,铺至萌发容

5、器底部,用蒸馏水润湿。置于光照培养架上,25℃,萌发48小时。保持水分(以用手指摁下有水渗出为最佳)。3.制备萌发底床往花盆中加入蛭石,从底盘中加入适量水,保证蛭石保持湿润,不黏手的情况。将已经发芽的种子点播到花盆中,每盆9株,然后用保鲜膜覆盖,待大豆发芽后再用蛭石散播盖住种子,然后移到阳光房,保持水分,待其生长。4.生长培养每隔两天向培养装置中浇水,标准蛭石湿润为最佳;待大豆子叶完全干瘪、脱落后,开始浇灌培养液,方法与浇水相同,每隔两天浇一次,共三次。5.种植数量统计要求进行发芽率的统计,进行生长情况的数据记录。取材时间:取材记录表日期10.26(周

6、六)10.29(周二)11.2(周六)11.5(周二)11.9(周六)11.12(周二)11.14(周四)11.16(周六)11.18(周一)11.19(周三)11.21(周五)11.23(周日)11.25(周二)11.27(周四)11.29(周六)取材数量(颗)999999181818181818181818备注测量测量测量测量测量测量放冰箱测量放冰箱测量放冰箱测量测量放冰箱测量二、可溶性糖含量:苯酚法。 1.实验材料:大豆子叶以及第一片真叶。 2.试剂 (1). 90 %苯酚溶液:称取 90 g 苯酚( AR ),加蒸馏水溶解并定容至 100 mL

7、 ,在室温下可保存数月。 (2)9 %苯酚溶液:取 3 mL 90 %苯酚溶液,加蒸馏水至 30 mL ,现配现用。(3)浓硫酸(比重 1.84 )。 (4)1 %蔗糖标准液:将分析纯蔗糖在 80 ℃下烘至恒重,精确称取 1.000 g ,加少量水溶解,移入 100 mL 容量瓶中,加入 0.5 mL 浓硫酸,用蒸馏水定容至刻度。 (5). 100 μg/L 蔗糖标准液:精确吸取 1 %蔗糖标准液 l mL 加入 100 mL 容量瓶中,加蒸馏水定容。 3.仪器设备 分光光度计,水浴锅, 20 mL 刻度试管,移液管1ml、5ml各一支,记号笔,吸水纸

8、适量。4.实验步骤 (1 )标准曲线的制作 :取 20 mL 刻度试管 11 支,从 0 ~ 

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