果实采后品质测定方法总结

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1、果实采后品质测定方法总结将整株按照花球、茎、叶、根4个器官分割，清洗，叶片取植株中部健壮的成熟叶片，重复间取相同部位。含水量测定所需仪器：烘箱，天平，滤纸取样，洗净，105°C杀青2小时，70°C烘干至恒重，测定其含水量可溶性固形物测定一、试剂：二、仪器：手持式折光仪（手持式糖度计）、研体、滴管、滤纸、擦镜纸、蒸憾水三、实验步骤1.样品制备：取5.0g果实放入研体磨碎，4000r/m,离心10min取汁液。2.调零：打开手持式折光仪棱镜盖板，用擦镜纸轻擦折光镜面，滴儿滴蒸镭水于折光镜面上，合上盖板，将仪器对向光线，由目镜观察，转动棱镜旋钮，使视野分成明暗两部分。若有偏离，

2、用专用螺丝刀补偿器旋钮，使视野分为黑白两色，同时使明暗分解线与标尺上的0位重合。打开盖板擦干水分3.测定，滴入样品在折光镜上，并读取读数。重复三次，计算平均值和标准偏差。叶绿素测定一、仪器设备：1）分光光度计；2）电子顶载天平（感量0.01g）；3）研钵；4）棕色容量瓶；5）小漏斗；6）定量滤纸；7）吸水纸；8）擦境纸；9）滴管。二、试剂：1）80%丙酮；2）石英砂；3）碳酸钙粉。三、实验步骤1）取新鲜叶片（或其它绿色组织）或干材料，擦净组织表面污物，剪碎（去中脉），混匀。2）称取剪碎的新鲜样品0.5g,共3份，分别放入研钵中，加少量石英砂和碳酸钙粉及2〜3ml丙酮，研成

3、均浆，再加丙酮10ml,继续研磨至组织变白。静置3〜5mino3）取滤纸1张，置漏斗中，用乙醇湿润，沿玻棒把提取液倒入漏斗中，过滤到25ml棕色容量瓶屮，用少量丙酮冲洗研钵、研棒及残渣数次，最后连同残渣一起倒入漏斗屮。4）用滴管吸取丙酮，将滤纸上的叶绿体色素全部洗入容量瓶中。直至滤纸和残渣中无绿色为止。最后用丙酮定容至25ml,摇匀。5）把叶绿体色素提取液倒入光径1cm的比色杯内，以80%丙酮为空口，在波长663nm和645nm下测定吸光度。四、实验结果计算叶绿素a的含量=12.7xOD663・2.69xOD645叶绿素b的含量=22.9xOD645・4.86xOD663

4、叶绿素a、b的总含量=8.02xOD663+20.20xOD645Brandford法检测蛋白质含量-、仪器和试剂1.仪器：分光光度计、移液抢、具塞刻度试管、烧杯、量瓶、研钵、85%磷酸2.试剂：考马斯亮蓝G-250染料、牛血清蛋白、90%乙考马斯亮蓝G-250:称取lOOmg考马斯亮蓝，溶于50ml90%乙醇中,加入100ml85%的磷酸，再用蒸憾水定溶到1L,贮于棕色瓶中。标准牛血清蛋白溶液:100ug/ml牛血清蛋白：称取牛血清蛋白25ing加水溶解并定溶至100ml,吸取上述溶液40ml,用蒸憾水稀释至100ml即可。二、实验步骤1.标准曲线的绘制取6支试管，按下

5、表加入试剂（0〜100ug/m1的标准蛋白）。混合均匀后，向各管中加入5ml考马斯亮蓝溶液，摇匀，并放置5min左右，用lcm光径的比色皿在595nm下比色测定吸光度。以蛋白质浓度为横坐标，以吸光度为纵坐标绘制标准曲线。绘制标准曲线的各试剂加入量管号123456标准蛋白质/ml00.200.400.600.801.00水/ml1.000.800.600.400.200蛋白质质量/ml0204060801002.样品的测定（1）样品的提取：称取鲜样0.25・0.5g,用5ml水研磨成匀浆后，3000r/min离心10min,取上清液1.0ml（视蛋白质含量适当稀释）于试管中

6、（每个样品重复2次）。（2）加入5ml考马斯亮蓝溶液，充分混合，放置2min后在595nm下比色，测定吸光度，并通过标准曲线查得蛋白质含量。四、结果计算样品中蛋白质含量=V5x^xl000（mg/g）式中：C—查标曲值；VT—提取液总体积；WF—样品鲜重；VS—测定时加样量，mlo总糖和还原糖的测定——3,5—二硝基水杨酸法一、试剂3,5—二硝基水杨酸（DNS）试剂：称取6.5gDNS溶于少量热蒸饰水中，溶解后移入1000ml容量瓶中，加入2mol/L氢氧化钠溶液325ml,再加入45g丙三醇，摇匀，冷却后定容至1000ml。葡萄糖标准溶液：准确称取干燥恒重的葡萄糖200

7、mg,加少暈蒸馅水溶解后，以蒸馅水定容至100ml,即含葡萄糖为2.0mg/mlo6moVLHC1：取250ml浓HC1（35%〜38%）用蒸饰水稀释到500ml。碘一碘化钾溶液：称取5g碘，10g碘化钾溶于100ml蒸镭水中。6NNaOH：称取120gNaOH溶于500ml蒸懈水中。0.1%酚酥指示剂。二、器材WFJUV-2000型分光光度计，水浴锅，电炉，15mmxl80mm试管。三、操作方法1、葡萄糖标准曲线制作取5支15mmx180mm试管，按下表加入2.0mg/ml葡萄糖标准液和蒸饰水。管号葡萄糖标准液（/ml）蒸憾