羟基磷灰石和壳聚糖制备微米级微球支架

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1、羟基磷灰石和壳聚糖制备微米级微球支架  运用组织工程骨进行骨组织再生修复已成为当下研究的热点之一。而生物支架在骨缺损的修复过程中起到关键性作用,被誉为组织工程的基石.复合类仿生支架(有机物与无机物结合)可以模拟天然成熟骨组织的结构,在促进干细胞增殖、骨向分化等方面具有显着优势[1].羟基磷灰石(hydroxyapatite,HAp)作为人体骨骼和牙齿的主要组成,生物相容性良好,并有足够的机械强度可承受体内压力;纳米级HAp利于成骨细胞黏附,具有骨诱导性,常被作为仿生支架的制备原料[2].壳聚糖(chito

2、san,CS)作为一种天然的再生聚合物,生物性能佳,易于化学改性并对体内大分子有高度亲和性,是一类颇有前景的组织工程支架材料[3].该研究采用微流体技术将纳米HAp和CS制备成微米级微球支架,并通过一系列细胞学实验评估其作为组织工程支架的生物学作用。  1材料与方法  1.1材料及设备  1.1.1实验动物与试剂SPF级雄性4周龄SD大鼠20只,由安徽医科大学实验动物中心提供。微球制备相关试剂(国药集团化学试剂有限公司),高糖型DMEM(美国Invitrogen公司),胎牛血清(FBS)(中国四季青公司)

3、,异硫氰酸标记的鬼笔环肽(FITC-Phalloidin)、DAPI(美国Sigma公司),琼脂糖(美国Solarbio公司).  1.1.2主要仪器微量进样泵(中国兰格恒流泵有限公司),pH计(PHS-3B,中国上海虹益公司),Countstar自动细胞计数仪(IC1000,中国上海睿钰生物科技有限公司),荧光倒置显微镜(DMI3000B,德国Leica公司),场发射扫描电子显微镜(JSM-6700F,日本JEOL电子公司),共聚焦扫描式显微镜(SP5-DMI6000-DIC,德国Leica公司).  

4、1.2方法  1.2.1HAp纳米颗粒合成5mmol尿素溶于20ml乙醇与水(3∶1)混合溶液中,加入CaCl2(0.1mol/L,8.35ml)与NaH2PO4(0.1mol/L,5ml),pH值调至11.9.搅拌30min,置于80℃烘箱24h.产物洗涤冻干备用。  1.2.2复合微球制备及显微镜下形态学观察CS及HAp各40mg加入19.6ml蒸馏水中,超声破碎20min,所得HAp-CS混合溶液作为内相,环己烷溶液(含3%司班80)作为挤出相。利用微量进样泵控制两相挤出速度,外向1ml/min,内

5、相0.05ml/min,进行微球制备,NaOH乙醇溶液(0.4mol/L)进行收集固化,所得HAp-CS复合微球蒸馏水反复清洗,显微镜下观察微球形态。  1.2.4细胞黏附率及增殖率微球高温高压灭菌了,与P2代骨髓间充质干细胞(bonemarroesen-chymalstemcells,BMSCs)体外共培养。黏附率:细胞与微球复合之比为50∶1(细胞初始浓度为C0=5104/ml).设置3个复管,置于培养摇床上,先动态培养5min,后静置30min,交替进行6h.1、2、3、4、5、6h等6个时间点,分

6、别吸取1ml细胞微球混合溶液,静置1min,上清液中的游离细胞计数为Ct,黏附率为(C0-Ct)/C0100%.取3个复管平均值。增殖率:前6h动静态交替培养操作同上,设置3个复管。1、3、6、9d时,取1ml细胞微球混悬液,静置后吸除上清液,PBS清洗3次,胰酶消化,定容至1ml,细胞和微球均计数,细胞浓度为C,每毫升微球数为N,二者之比为C/N,该数值随时间的增长体现了细胞在微球上的增殖。3个复管所得值求平均数。共2页:12  1.2.5扫描电镜观察BMSCs与微球支架的复合状态细胞材料复合1、3、6

7、、9d后,每种材料各取1ml细胞材料混悬液,PBS清洗3次,2.5%戊二醛室温固定30min,冷冻干燥后进行扫描电镜观察。  1.2.6细胞骨架染色及共聚焦扫描式显微镜观察细胞材料复合后6d,取1ml细胞材料混悬液,PBS轻缓清洗3次,4%多聚甲醛室温固定20min,PBS清洗(5min3).FITC-Phalloidin(5μg/ml)避光染色40min.PBS清洗10min,清洗3次。DAPI(1μg/ml)避光染5min.PBS洗3次。共聚焦扫描式显微镜观察。  1.2.7体外模具实验6

8、cm培养皿中加入5ml高温高压灭菌的2%琼脂糖后,其厚度为2mm.待其凝固后,使用直径为5mm的打孔器,琼脂糖上便形成直径为5mm、厚度为2mm的圆形缺损,与标准骨缺损尺寸吻合。将细胞和微球共培养1d后填充至上述模具中,表面盖筛X,加入5ml培养液,每2~3d换一次液,培养14~21d,观察组织块形成情况。  2结果  2.1显微镜下微球形态观察将所制备的HAp-CS复合微球分散在水中,显微镜下可见其表面光滑,粒径均匀,大小为

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