蛋白质测定常用的几种方法

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1、I.紫外分光光度法测定蛋白质的含量一、实验目的掌握紫外分光光度法测定蛋白质的含量的方法。二、实验原理蛋白质分子中存在含有共轭双键的酪氨酸和色氨酸，使蛋白质对280nm的光波具有最大吸收值，在一定的范围内，蛋白质溶液的吸光值与其浓度成正比，可作定量测定。该法操作简单、快捷，并且测定的样品可以回收，低浓度盐类不干扰测定，故在蛋白质和酶的生化制备中广泛被采用。但此方法存在以下缺点：1．当待测的蛋白质中酪氨酸和色氨酸残基含量差别较大是会产生一定的误差，故该法适用于测定与标准蛋白质氨基酸组成相似的样品。2．若样品中含有其他在280nm吸收的物质如核酸等化合物

2、，就会出现较大的干扰。但核酸的吸收高峰在260nm，因此分别测定280nm和260nm两处的光吸收值，通过计算可以适当的消除核酸对于测定蛋白质浓度的干扰作用。但因为不同的蛋白质和核酸的紫外吸收是不同的，虽经校正，测定结果还存在着一定的误差。三、实验器材1．紫外分光光度计2．移液管3．试管及试管架4．石英比色皿四、材料与试剂1．标准蛋白质溶液：准确称取经凯氏定氮校正的牛血清清蛋白，配制成浓度为1mg/mL的溶液。2．待测蛋白溶液：酪蛋白稀释溶液，使其浓度在标准曲线范围内。五、操作方法1．标准曲线的制作按表1加入试剂。表1标准曲线的制作管号123456

3、78牛血清白蛋白溶液/mL00.51.01.52.02.53.04.0蒸馏水/mL43.53.02.52.01.51.00蛋白质浓度/（mg/mL）00.1250.250.3750.500.6250.751.00A280混匀后,选用1cm的石英比色皿，在波长280nm处测定各管的吸光值。以蛋白质的浓度为横坐标，吸光度为纵坐标，绘制出血清蛋白的标准曲线。2．未知样品的测定取待测蛋白质溶液1mL，加入3mL蒸馏水，在280nm下测定其吸光度值。并从标准曲线上查出待测蛋白质的浓度。II.Bradford法测定蛋白质的含量一、实验目的学习考马斯亮蓝G-25

4、0染色法测定蛋白质的原理和方法。二、实验原理1976年Bradford建立了用考马斯亮蓝G-250与蛋白质结合的原理，迅速而准确的定量蛋白质的方法。染料与蛋白质结合后引起染料最大吸收光的改变，从465nm变为595nm。蛋白质-染料复合物具有高的消光系数，因此大大提高了蛋白质测定的灵敏度（最低检出量为1μg）。染料与蛋白质的结合是很迅速的过程，大约只需2min，结合物的颜色在1h内是稳定的。一些阳离子（如K+，Na+，Mg2+），（NH4）2SO4，乙醇等物质不干扰测定，而大量的去污剂如TritonX-100，SDS等严重干扰测定，少量的去污剂可通

5、过用适当的对照而消除。由于染色法简单迅速，干扰物质少，灵敏度高，现已广泛用于蛋白质含量的测定。三、实验器材1．天平2．分光光度计3．试管及试管架4．比色皿5．移液管四、材料与试剂1．考马斯亮蓝G-250：称取100mg考马斯亮蓝G-250溶于50mL95%乙醇中，加入100mL85%（W/V）磷酸，将溶液用水稀释到1000mL。[试剂的终含量为：0.01%考马斯亮蓝G-250，4.7%（W/V）乙醇，和8.5%（W/V）磷酸]。2．标准蛋白质溶液：可用牛血清白蛋白预先经凯氏定氮法测定蛋白含氮量，根据其纯度配制成0.1mg/mL的溶液。3．未知样品液

6、。五、操作方法1．牛血清蛋白标准曲线的制作取6支试管，编号为1、2、3、4、5、6，按表2加入试剂。表2牛血清蛋白标准曲线的制作试管号123456标准蛋白液/mL00.150.300.450.600.75水/mL10.850.70.550.40.25每管中所含标准蛋白质的量/（mg/mL）01530456075G-250染色液/mL555555室温下静置2minA595混匀后静置2min，以1号管作空白对照,测定各管595nm下的吸光值，以吸光植为纵坐标，蛋白浓度为横坐标作图，得到标准曲线。2．未知样品中蛋白质的测定取未知浓度的蛋白液（通过适当稀释

7、，使其浓度控制在0.015-0.1mg/mL范围内）加到1mL试管内，再加入G-250染色液5mL混匀，测其595nm下的吸光度，对照标准曲线求出未知蛋白液的浓度。六、思考题1．比较两种方法的测定结果,分析紫外法和Bradford法测定蛋白质含量的各自有哪些优点和缺点？2．为什么标准蛋白质必须用凯氏定氮法测定纯度？3．若样品中含有核酸杂质，紫外法测定时应如何排除干扰？III.总氮量的测定—微量凯氏定氮法一、实验目的①学习和掌握凯氏定氮法的原理②掌握微量凯氏定氮法的操作技术，包括未知样品的消化、蒸馏、滴定几含氮量滴定。二、实验原理当被测定的天然含氮有

8、机物与浓硫酸共热消化时，分解出氮、二氧化碳和水、其中氮，与硫酸化合成硫酸铵。由于分解反应进行得很慢，故可加入硫酸铜和硫酸钾