《生理学》实验指导教程

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1、实验一生理学实验常用仪器使用方法，手术器械的识别及急性动物实验手术操作实验二低温对蟾蜍坐骨神经干动作电位传导速度及不应期的影响实验三出血、凝血时间的测定，影响兔血液凝固的因素实验四兔减压神经放电、动脉血压调节及心血管受体分析实验五生理因素对兔呼吸运动及膈神经放电的影响实验六影响家兔循环、泌尿、呼吸的综合实验实验总论一、实验目标与要求通过实验使学生初步掌握生理学实验的一些基本操作技能，学会检查人体功能活动的一些测试方法，验证和巩固某些基本理论知识，培养认真、负责、严谨求实的态度和团结协作的良好作风，增强对事物进行观察、比

2、较、分析和综合的能力。为此要求：1.实验前应仔细阅读实验指导，了解本次实验的目标、原理、步骤等，并复习有关理论知识。2.实验时要按照实验指导及教师的指示进行操作和观察，客观、及时地记录实验现象或结果，并联系讲授内容进行思考。3.实验后须及时整理实验记录，分析实验结果，按照规定格式书写实验报告，按时交负责教师评阅。二、实验报告书写要求因实验内容不同，可以填表、叙述等形式写出报告。书写要整洁，文字应简练、通顺。首先注明班级、组别、姓名、实验日期，写出实验题目、实验目标等项目，然后着重书写实验结果以及分析和讨论。并要求：1.

3、实验结果必须凭自己观察，随时记录，如实填写。有曲线记录的，经必要注明后，剪贴在实验报告上。2.分析和结论实验结果的分析，是根据学过的理论知识对结果进行解释。如果出现非预期的结果时，应分析其可能的原因。实验结论，是从实验结果中归纳出概括性的判断，即本次实验所验证的理论概要。三、生理实验室规则1.须携带实验指导、记录本等文具准时进实验室，并穿戴实验衣帽。2.遵守学习纪律，保持实验室安静；严肃、认真、安全地进行实验，不做与本实验无关的事情。3.实验室的一切物品，未经教师许可，不得擅自取用或带出。4.各组应用的实验器材、物品，

4、在使用前应查点清楚，不得随意与别组调换；如遇机件不灵或损坏时，应报告教师，以便及时修理或更换。5.节约水电及一切消耗性物品，爱护仪器和用具。损坏物品应赔偿。6.保持实验室整洁。公共器材和药品用毕后立即归还原处，动物尸体和废弃物应放到指定地点。7.实验完毕，应将实验器材、用品和实验台收拾干净，查点清楚，放还原处。各小组轮流搞好实验室的清洁卫生，关好窗户、水电，经教师检查无误后，方可离开。 实验一（一）生理学实验常用仪器使用方法，手术器械的识用[目的和原理]：熟悉RM6240生物机能系统的组成、结构；掌握RM6240系统的

5、功能；哺乳类动物手术器材识别、使用。[实验对象]：无[实验器材和药品]：蛙类手术器材一套，哺乳类动物手术器材一套，RM6240生理信号采集处理系统。[实验步骤和项目]：12一、RM6240生理信号采集处理系统基础知识1．采用windows中文图形界面，操作简便易学，可使用鼠标，可将图形或实验数据导入Word、Excel中；2．系统功能更强大与灵活，可处理多种生理信号，具有实时显示、记录、分析、处理、打印等多种功能。3．运行软件应先开外置仪器，然后再进入“实验系统”，否则系统无法进行“示波”或“记录”，只能对以前记录的波

6、形进行分析。4．系统工作的三个环境⑴示波环境：可以调节各种实验参数，不进行存盘；⑵记录环境：以临时文件形式将信号实时存储到硬盘；⑶分析环境：可对记录的波形进行测量、分析、编辑、打印。5．包括菜单栏、工具栏、监视参数区、信号显示区、控制参数区。6．菜单说明⑴文件：新建、打开、保存、打印模式设置⑵编辑⑶示波：开始示波、开始记录、暂停记录、停止记录⑷分析：标记查询、开始反演、鼠标捕捉、区域测量、取消标志线⑸实验：系统预设了许多实验项目的参数，实验时只要选择相应的项目即可进行实验，或根据实际情况对参数稍加调整。⑹工具：纵向缩放

7、、横向缩放、浏览视图、网格切换、选项⑺查看⑻帮助7．标记框标记方式选择、增加标记、删除标记、标记词组选择、打标记二、蛙类手术器材的识别、使用1．剪刀：粗剪刀用于剪骨骼和皮肤等粗硬组织；手术剪用于剪肌肉、腱膜等一般软组织；眼科剪刀用于剪神经、血管、心包膜等细软组织。2．镊子：手术镊用于牵提皮肤夹捏肌肉等组织；眼科镊用于夹捏细软组织。3．探针：用于破坏脑和脊髓。4．玻璃分针：用于分离神经、血管。5．锌铜弓：用于对神经—肌肉标本施加刺激，以检查其兴奋性。6．蛙心夹：用于夹住心尖，另一端借缚线连于杠杆，以描记心脏舒缩。7．蛙板

8、和蛙钉：用蛙钉将蛙腿固定于一约20cm×15cm的木板上。制备神经肌肉标本，应在清洁的玻璃板上操作，为此可在板中央嵌一玻璃板。三、哺乳类动物手术器材的识别、使用1．手术刀：用于切开皮肤和器官。2．剪刀：剪毛用粗剪刀；剪线及一般软组织用手术剪刀；剪破血管、输尿管以便插管时使用眼科剪刀。3．镊子：圆头镊子用于夹捏组织和牵提切口处的皮肤