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时间:2018-07-21
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1、肠道菌群细菌的鉴定一、实验目的1.掌握革兰染色法。2.掌握IMViC试验。二、仪器与试剂玻片,接种环,生理盐水,酒精灯,结晶紫溶液,卢戈氏染液,石炭酸-复红溶液,沙黄液,光学显微镜,二甲基氨基苯甲醛试剂,葡萄糖蛋白胨水培养基,甲基红试剂(甲基红0.02g,95%酒精60mL,蒸馏水40mL),6%α-萘酚酒精溶液,40%KOH,铵盐作为唯一氮源,并利用枸橼酸盐作为唯一碳源的培养基,层析滤纸,正丁醇,甲酸,1.5%乳酸,1.5%乙酸溶液,3%溴甲酚蓝酒精溶液,层析缸,需氧血琼脂平板,厌氧血琼脂平板,七叶苷培养基,胆汁七叶苷培养基,65g/LNaCl血清肉汤,PYR试剂,DNA琼脂平板,1mo
2、l/L盐酸,MRS培养基,X-Gal。三、实验步骤1.革兰染色法(1)涂片:取玻片在火焰上稍微加温,以清洁纱布擦净,放置桌上,左手握培养皿,右手持接种环,用无菌接种环取生理盐水一滴,置于载玻片的中央,再用接种环在火焰上灭菌,待冷却后,取培养细菌少许与盐水混匀,直接取1~2环菌液作涂片即可,涂片应厚薄均匀。接种环采菌后,要通过火焰灭菌才能放下。(2)干燥:目的是是菌体水分慢慢蒸发,固定菌形。涂片最好在室温中自然干燥,必要是将标本面向上,小心断续在弱火高处略烘,以助水分蒸发;但切勿紧靠火焰,以致标本烤枯,不堪检视。(3)固定:手执玻片一端,标本面向上,在火焰外层快速地来回通过三次,共2-3秒,
3、以玻片反面触及皮肤不觉过烫为度。冷却后,染色。目的是杀死细菌,是菌体与玻片粘附较牢以及改变对染料的通透性,因活的细菌一般不能使许多染料进入细胞。 (4)初染:将涂片标本夹持于左手,滴加结晶紫溶液盖满涂抹面,染色1~3分钟,用流水缓缓冲洗(即将龙头打开使水缓慢流出,将玻片倾斜使水在玻片面上端沿玻片流下冲洗染液)直至无颜色流下为止。(5)媒染:加卢戈氏染液4~5滴作用30秒到一分钟,再按上法冲洗,并将片上积水轻轻洒净。(6)脱色:在95%酒精缸中脱色约3~5秒,拿出玻片使酒精由玻片流下,如此反复2~3次,直至流下酒精略呈淡紫色为止,现按上法以流水冲洗,并将玻片轻轻洒净。(7)复染:用稀释石炭酸
4、-复红(或沙黄液)复染半分钟后按上法冲洗。(8)光学显微镜下观察细菌染色情况(9)G+菌被染成紫色;G-菌被染成红色。 2.大肠杆菌(1)革兰染色法实验结果应为被染成红色,即G-菌。 (2)IMViC试验靛基质(吲哚)试验斑点试验法:将一片滤纸放在培养皿的盖子上或一张载玻片上,滴加1~1.5mL二甲基氨基苯甲醛试剂液于滤纸上使其变湿,取18~24h琼脂平板培养物涂布于浸湿的滤纸上,在1~3min内观察。棕色的试剂由紫红变为红色者即为阳性。甲基红(MR)试验:取一种细菌的24h培养物,接种于葡萄糖蛋白胨水培养基中,置37℃培养48~72h,取出后加甲基红试剂3~5滴,立即观察结果。如果培养液
5、呈红色者为阳性,橙色者为可疑,黄色者为阴性。二乙酰(V-P)试验:将被检细菌接种于葡萄糖蛋白胨水培养基后,于35~37℃培养48h,于2mL培养液内加入甲液(6%α-萘酚酒精溶液)1mL和乙液(40%KOH)0.4mL,摇振混合。试验时强阳性者约于5min后,可产生粉红色反应。如长时间无反应,置室温过夜,次日不变者为阴性。枸橼酸盐利用试验:将被检细菌少量接种到培养基(铵盐作为唯一氮源,并利用枸橼酸盐作为唯一碳源)中,37℃培养2~4d,观察培养基颜色变化。培养基变蓝色,阳性;不变,阴性。实验结果应分别为:阳性,阳性,阴性,阴性。3.乳酸杆菌(1)革兰染色法实验结果应为被染成紫色,即G+菌。
6、 (2)乳酸纸层析法层析滤纸的制备——将层析滤纸剪成1.5cm*11cm的长条状,在距层析纸一端约4cm处用铅笔划线确定点阳线,使用前充分干燥。配制展开剂——正丁醇:甲酸:水=80:15:5配制标准液——配制1.5%的乳酸、1.5%的乙酸溶液。制备待测样品——将培养基菌种加入生理盐水37℃培养24h后离心,收集上清液离心,收集上清液。点样——用毛细管分别吸取发酵液,多次点样于滤纸条上,样点直径不宜超过2mm,平衡2h层析——将点好样的层析纸放入,使点有样品的一端浸在展开剂中,但不可浸及样点。观察展开情况,待展开剂前沿到达离层析纸另一端约1.5cm处,取出层析纸。显色——以3%溴甲酚蓝酒精溶
7、液为显色剂,待层析液挥发之后,向层析滤纸喷洒并计算Rf值。实验结果Rf值应该一致。4.脆弱拟杆菌耐氧试验从每个琼脂平板上挑取4~5个性状不同的菌落,每个菌落分别转种于2块需氧血琼脂平板和1块厌氧血琼脂平板(每个琼脂平板可划4~6区,每区种一个可疑菌落),然后将平板分别放置在需氧、二氧化碳和厌氧环境中培养。实验结果应为在厌氧环境生长,而在需氧和二氧化碳环境中不生长。5.肠球菌(1)革兰染色法实验结果应为被染成紫色,即G+菌
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