sds-page电泳标准操作流程

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1、SDS-PAGE电泳标准操作规程（网上）3.程序：3.1.制胶3.1.1组装胶架将洁净、无水的玻片对齐，形成空腔，插入塑料框的凹槽中，注意箭头向上，并确保下端平齐。放于制胶架上夹紧，下端紧贴密封条。3.1.2分离胶的配置3.1.2.110%分离胶配方如下表：10%胶蒸馏水30%Acr-Bis(29:1)1.5MTris-HclPH8.810%SDS10%AP(过硫酸铵)TEMED5ml1.3ml1.7ml1.9ml0.05ml0.05ml0.007ml3.1.2.2灌胶混匀后用移液枪将凝胶溶液沿玻

2、棒小心注入到长、短玻璃板间的狭缝内(胶高度距样品模板梳齿下缘约1cm)。3.1．2.3液封在凝胶表面沿短玻板边缘轻轻加一层水以隔绝空气，使胶面平整。静置约30min观察胶面变化，当看到水与凝固的胶面有折射率不同的界限时，表明胶已完全凝固，倒掉上层水，并用滤纸吸干残留的水液。3.1.3浓缩胶的配置3.1.3.15%浓缩胶配方下表：5%胶蒸馏水30%Acr-Bis(29:1)0.5MTris-HclPH6.810%SDS10%AP(过硫酸铵)TEMED2ml1.4ml0.33ml0.25ml0.02m

3、l0.02ml0.02ml3.1.3.2插入制胶梳混匀后用移液枪将凝胶溶液注入到长、短玻璃板间的狭缝内(分离胶上方)，轻轻加入样品模板梳，小心避免气泡的出现。约30分钟，聚合完全。3.2.电泳3.2.1安装电泳槽将制备好的凝胶板取下，小心拔下梳子。两块10%的凝胶板分别插到U形橡胶框的两边凹形槽中，可往上提起使凝胶板紧贴橡胶。将装好玻璃板的胶模框平放在仰放的贮槽框上，其下缘与贮槽框下缘对齐，放入电泳槽内。倒入1Xtris-gly电泳缓冲液。3.2.2样品处理对于蛋白样品直接取80µl的样品，依次加

4、上20µl5xbuffer(加了B-巯基乙醇)，混匀。对于菌体或组织等固体样品，取少量样品加100ul2xbuffer(加了B-巯基乙醇)煮沸10分钟。3.2.3加样用移液枪取处理过的样品溶液10μl，小心地依次加入到各凝胶凹形样品槽内，marker加入到其中一个槽内，为区别两块板，marker可加在不同的孔槽中。3.2.4电泳将电泳槽放置电泳仪上，接通电源，正负极对好。电压调至约150v保持恒压。待溴酚蓝标记移动到凝胶底部时，关电源，把电泳缓冲液倒回瓶中。3.2.5剥离胶把电泳槽取出，两块板拿下

5、来，用刮片从长短玻片中间翘起，再把浓缩胶刮掉，取下。3.3.染色放于加有R250染色液的染色皿中，染液漫过胶即可，置于摇床上，转速约为45r/min，时间约1小时，完成后染液倒掉并用水洗掉染液。3.4.脱色取出染色过的胶放于加有脱色液的染缸里，脱色液漫过胶即可，置于摇床上，转速约为45r/min，时间约1小时，本底色脱净，条带清晰可见即可，完成后倒掉脱色液。3.5.拍照将脱色后的胶置于透明文件夹中，把胶上面的气泡赶出（用前也可用酒精棉球擦干净文件夹），放到扫描仪上，拍照。4.注意事项4.1根据目的

6、蛋白的大小选择合适的胶片浓度。一般为100KD-50KD选用10%胶；50KD-30KD选用12%胶；30KD-10KD选用15%胶。4.2要根据样品浓度来加样品溶解液。每加一个样品后换一支吸头或清洗吸头后再点另一个样品。4.3制备聚丙烯酰胺凝胶时，倒胶后常漏出胶液，那是因为二块玻璃板与塑料条之间没封紧，留有空隙，所以这步要特别留心操作.4.4电泳完毕撬板取凝胶时要小心细致不能把胶弄破。4.5电泳缓冲液可重复利用，如果胶上出现不正常痕迹，就要及时更换新液。4.6分离胶高度控制得当，确保有大约1cm

7、左右的浓缩胶空间。过长或过短均不能得到理想的电泳结果。4.7电泳染色液注意进行回收再利用，一般可重复使用2-3次。4.8AP和TEMED是催化剂，加入的量要合适，过少则凝胶聚合很慢甚至不聚合，过多则聚合过快，影响倒胶。l配胶用的试剂，要提前配好：30%丙烯酰胺贮存液丙烯酰胺29.2g，亚甲双丙烯酰胺0.8g，混匀后加ddH2O，37℃溶解，定容至100ml，棕色瓶存于4℃。1.5MTris-HCl(pH8.0)：Trisbase18.17g加ddH2O溶解，浓盐酸调pH至8.0，定容至100ml，

8、4℃保存。1MTris-HCl(pH6.8)：Trisbase12.11g加ddH2O溶解,浓盐酸调pH至6.8，定容至100ml，4℃保存。10%SDS：电泳级SDS10.0g加ddH2O68℃助溶，浓盐酸调至pH7.2，定容至100ml。10%过硫酸铵（AP）：1g过硫酸铵加ddH2O至10ml。l跑胶用试剂：电泳缓冲液(pH8.3Tris3.02g，甘氨酸18.8g，10%SDS10ml加ddH2O溶解，定容至1000ml。2´SDS电泳上样缓冲液：1MTris-HCl(pH