α-淀粉酶检测操作规程

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1、α-淀粉酶活力检测操作规程1酶活定义1g固体酶粉（或1mL液体酶），于60℃、pH=6.0条件下，1h液化1g可溶性淀粉，即为1个酶活力单位，以u/g(u/mL)表示。2原理在一定温度和PH值条件下，α-淀粉酶将淀粉分子链中的α-1，4葡萄糖苷键随机切断成长短不一的短链糊精、少量麦芽糖和葡萄糖，而使淀粉对碘呈篮色的特异性反应逐渐消失，呈红棕色，其颜色消失的速度与酶活力有关，故可通过固定反应后的吸光度计算其酶活力。3仪器和设备3.1分析天平：感量0.0001g3.2精密pH计：精确至0.013.3分光光

2、度计：应符合GB9721有关规定3.4电热恒温水浴锅：30～100℃，±0.2℃3.5计时器：每小时误差不超过5秒4试剂与溶液4.1原碘液：称取碘（I2）11g、碘化钾（KI）22g，用少量水使碘完全溶解，然后定容至500mL，贮于棕色瓶中。4.2稀碘液：吸取原碘液2.00ml，加碘化钾20g，用水溶解并定容至500mL，贮于棕色瓶中。4.320g/L可溶性淀粉溶液：称取可溶性淀粉2.000g，精确至0.001g，用水调成浆状物，在搅动下缓缓倾入70mL沸水中，然后，以30ml水分几次冲洗装淀粉的烧杯

3、，洗液并入其中，加热至完全透明，冷却，定容至100mL。此溶液需要当天配置。4.4磷酸缓冲液（pH=6.0）称取磷酸氢二钠（Na2PO4·12H2O）45.03g、柠檬酸（C6H8O7·H2O）8.07g，使水溶解并定容至1000mL。配好后用pH计校正。5分析步骤5.1待测酶液的制备：称取酶粉1g，精确至0.0002g（或吸取液体酶1.00mlL），先用少量的磷酸缓冲液溶解，并用玻璃棒捣研，将上请液小心倾入容量瓶，沉渣部分在加入少量缓冲液，如此捣研3～4次，最后全部移入100mL容量瓶中，用缓冲液定

4、容到刻度（将估计酶活力除以4，即酶活理应在3.7～5.6u/mL范围内），摇匀，通过4层纱布过滤，滤液供测定用。5.2测定：5.2.1吸取可溶性淀粉溶液20.0mL于试管中，加入缓冲液5.00mL，摇匀后，于（60±0.2）℃的恒温水浴中预热5min。5.2.2加入稀释好的待测酶液1.00mL，立刻记时，摇匀，准确反应5min。5.2.3立即吸取反应液1.00mL于稀碘液5.00ml中，摇匀，并以稀碘液做空白，于660nm波长下，用10mm比色皿，迅速测定其吸光度。根据吸光度查附表1，求得测试酶液的浓

5、度。6计算样品酶活力（u/g或u/mL）=c×n式中：c表示测试酶液的浓度（u/mL）n表示样品的稀释倍数7结果的允许差平行实验相对误差不得超过2%。附表1吸光度与测试α-淀粉酶酶浓度对照表吸光值酶浓度(u/ml)吸光值酶浓度(u/ml)吸光值酶浓度(u/ml)吸光值酶浓度(u/ml)0.1004.6940.1404.4920.1804.3010.2204.1320.1014.6890.1414.4870.1814.2970.2214.1280.1024.6840.1424.4820.1824.292

6、0.2224.1240.1034.6790.1434.4770.1834.2880.2234.1200.1044.6740.1444.4720.1844.2830.2244.1160.1054.6690.1454.4670.1854.2790.2254.1120.1064.6640.1464.4620.1864.2750.2264.1080.1074.6590.1474.4570.1874.2700.2274.1050.1084.6540.1484.4520.1884.2660.2284.1010.1

7、094.6490.1494.4470.1894.2610.2294.0970.1104.6440.1504.4420.1904.2570.2304.0930.1114.6390.1514.4380.1914.2530.2314.0890.1124.6340.1524.4330.1924.2480.2324.0850.1134.6290.1534.4280.1934.2440.2334.0820.1144.6240.1544.4230.1944.2400.2344.0780.1154.6190.1554

8、.4180.1954.2350.2354.0740.1164.6140.1564.4130.1964.2310.2364.0700.1174.6090.1574.4080.1974.2270.2374.0670.1184.6040.1584.4040.1984.2220.2384.0630.1194.5990.1594.3990.1994.2180.2394.0590.1204.5940.1604.3940.2004.2140.2404.0560.121