蛋白质电泳操作步骤

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1、SDS-PAGE电泳操作步骤:试剂配制:(实验中采用均为分析纯)(1)丙烯酰胺贮液(4℃下棕色瓶中储存,试剂尽量勿存储过久)丙烯酰胺贮液(T=30%,C=3%)称取29.1g丙烯酰胺和0.9g甲叉双丙烯酰胺,用双蒸水溶解,定容至100ml,过滤备用。(试剂有毒,操作中注意防护)(2)浓缩胶缓冲液(1mol/LTris-HCl,pH6.8)(4℃下棕色瓶中储存,试剂尽量勿存储过久)6.06gTris溶解于35ml双蒸水中,用浓盐酸调节pH至6.8,再用双蒸水定容至50ml。(3)分离胶缓冲液(1.5mol/LTris-HCl,pH8.8)(4℃下棕色瓶中储存,试剂尽量勿存储过久)18.

2、16gTris溶解于75ml双蒸水中,用浓盐酸调节pH至8.8,再用双蒸水定容至100ml。(4)10%SDS(5)10%过硫酸铵(APS):使用前新鲜配制,低浓度APS一般当天用当天配制,勿过夜使用。(6)尿素(7)TEMED(N,N,N’,N’-四甲基乙二胺)(8)电极缓冲液(1×)(棕色瓶中4℃储存,一般使用3-4次)0.025mol/LTris,0.192mol/L甘氨酸,0.1%SDS,pH8.3(9)电极缓冲液(2×)(棕色瓶中4℃储存,一般使用3-4次)0.050mol/LTris,0.384mol/L甘氨酸,0.1%SDS,pH8.3(10)样品缓冲液(pH6.8)(

3、4℃下棕色瓶中储存,试剂尽量勿存储过久)1.6ml浓缩胶缓冲液(pH6.8)+4ml10%SDS+0.6g二硫苏糖醇(DTT)+2.5ml87%甘油+0.1mg溴酚蓝,用双蒸水稀释到20ml.(11)考玛斯亮蓝R-250染色方法:a.固定液20%三氯乙酸b.脱色液250ml乙醇,80ml冰醋酸,加水稀释至1000ml。c.染色液称取0.29g考玛斯亮蓝R-250溶于250ml上述脱色液中样品处理:处理完样品应尽快使用,若存储,须于-20℃下。.CytC酶解样每管分别加入8µl细胞色素C(20mg/ml),10ul50mMTris-HCl(pH8.0),1µl胰蛋白酶(细胞色素C:胰蛋

4、白酶=50:1)。37℃水浴,2h。立即放入-20℃冰箱冷冻保存备用。上样前加15μІ上样BUFFER,75℃水浴5-10min大肠杆菌蛋白取10μІ工程菌种接入10nmlLB液体培养基里,过夜培养12h,取出1ml菌液离心10000g/r,5min。弃上清,用1mlTris-Hcl(pH8.050mM)洗涤1-2次,后分别加入20μІ(pH8.05mM)、10μІEDTA,-20℃保存。上样前加入2μІ5%X,再加入50μІ上样BUFFER,75℃水浴5-10min.CytC15μІCytC加入15μІ上样BUFFER,75℃水浴5-10min.低分子量肽标准取8-10μІMake

5、r(2mg/ml),加入10μІ上样buffer,再加入5μІddH2O,75℃水浴5-10min.SPI多肽的制备Ⅰ材料及试剂(试剂均为分析纯)纯大豆粉木瓜蛋白酶(sigmaP3250500-2000AU/g)正己烷巯基乙醇Tris-HCl缓冲液(0.03M、pH8.0)0.2MHCl叠氮钠考马斯亮蓝G250标准牛血蛋白Ⅱ制备方法ⅰ.SPI制备:大豆分离蛋白的制备参照Iwabuchi和Yamauchi[9]的方法,具体步骤如下:全脂豆粉加正己烷(1/5)室温下搅拌1h脱脂,于3000g离心5min,取沉淀反复脱脂两次,于沉淀中加入15~20倍含10mM巯基乙醇0.03M、pH8.0

6、的Tris-HCl缓冲液,室温搅拌1~2h,于20℃6000g离心25min,取上清液,用0.2MHCl调节pH至4.8,置于冰箱下层冷沉过夜,再于4℃9000g离心20min,取沉淀分散于少量水中,调节pH至7.0,搅拌1h充分溶解后于4℃下用含0.05%叠氮钠的蒸馏水透析2d,再用蒸馏水透析两次去叠氮钠,冷冻干燥即得大豆分离蛋白(SPI)。(可能透析会损失掉一定量的多肽。)ⅱ.SPI蛋白含量测定:利用考马斯亮蓝蛋白含量测定法,根据牛血蛋白作出的标准蛋白曲线,测定SPI的蛋白浓度:(具体方法参见《生物化学实验原理和方法》P174)测得1%(1mg/ml)的SPI吸光度为0.779,

7、求得即在SPI质量分数为1%的情况下,其蛋白浓度约为3mg/ml.ⅲ.SPI多肽制备:本实验采用木瓜蛋白酶水解SPI,制取SPI多肽。标准的酶解体系为溶于0.05mol/L,pH8.0Tris-HCl缓冲溶液的SPI溶液(质量分数为2%),含质量分数为0.05%的叠氮钠,先于38℃下预热5min,分别添加蛋白酶至750AU/mL,然后继续于反应温度下反应,反应时间也很影响SPI多肽的产率,木瓜蛋白酶持续低温水解16小时也可以产生较多小肽。反应混合物可定期取

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