rna甲醛变性胶电泳

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1、RNA甲醛变性胶电泳发布时间：11-10-28来源： 科学实验仪器网点击量：9312字段选择：大 中 小RNA甲醛变性胶电泳提取样品的总RNA后，一般根据RNA的凝胶电泳图来判断RNA的质量。由于RNA容易形成二级结构，因此常用甲醛变性胶来进行RNA电泳，得到的电泳图能真实反映RNA的质量状况一、试剂：DEPC（Sigma公司产品），MOPs（Bocherigmer公司产品），甲酰胺（Formamide，Sigma公司产品），溴酚蓝（BromphenolBlue，Sigma公司产品）。EDTA-

2、Na2，氢氧化钠，醋酸钠，甲醛，甘油，分析纯，国产。RNA甲醛变性胶电泳二、试剂配制：1、DEPC水的处理：用量筒量取去离子水2L，在通风橱中，加入2mlDEPC到2升去离子水中，终浓度为0.1%的DEPC。迅速盖上盖子，混匀，然后放在摇床中中速摇荡至少4hr，再高压灭菌。灭菌时将瓶盖松开，15磅灭菌20min。2、10×FABuffer（formaldehydeagarosebuffer：200mM的MOPs，50mM的NaAc，10mM的EDTA）：配制500ml，称取3.4gNaAC?3H

3、2O放入1000ml烧杯中，加入400mlDEPC处理过的去离子水，加入搅拌子，放在磁力搅拌器上溶解。然后加入20.9gMOPs，放在磁力搅拌器上溶解。再加1.86gEDTA二水二钠，放在磁力搅拌器上溶解。用1M灭过菌的NaOH调PH至7.0（约用NaOH40ml），用DEPC处理过的去离子水定容至500ml，装入棕色瓶中，写好标签，室温避光保存。4、5×甲醛变性胶加样缓冲液（5×loadingbuffer）：配制10ml。预先配制水饱和的溴酚蓝溶液：在1.5ml离心管中加入约0.1mg溴酚蓝，

4、加入1mlDEPC水溶解，充分振荡溶解，离心，可见离心管底部有溴酚蓝粉末剩余，上层液体即水饱和的溴酚蓝液。在15ml灭菌离心管中，依次加入以下各种成分：4.0ml10×FAbuffer3.1ml甲酰胺2.0ml100%的甘油720ul37%的甲醛80ul0.5M的EDTA（PH8.0）16ul水饱和的溴酚蓝100ulDEPC水混匀，分装，-20℃保存，常用放4℃保存。5、1×甲醛变性胶电泳缓冲液（1×runningbuffer）：20ml10×FAgelbuffer，4.0ml37%的甲醛，17

5、6ml水，放入电泳槽中使用，一般在3次电泳结束后需更换此电泳缓冲液。6、1.2%的甲醛变性胶：称0.4克琼脂糖，加入3.34ml10×FAgelbuffer，加入30mlDEPC水，微波炉融化，肉眼观察无颗粒状悬浮物。冷却至约50-60℃，再加入600l甲醛，倒入7.5×5.0cm的凝胶模具中。插入合适长度和宽度的梳子，室温放置约30min后即可使用。RNA甲醛变性胶电泳三、实验方法一般取0.3g的总RNA，加入1/5体积的5×加样缓冲液，65℃加热5min，冰上骤冷，以消除RNA的二级结构。建

6、议上样前在RNA样品中加入0.5-1.0ul的溴化乙锭（EtBr，浓度1.0mg/mL），而不在胶中加EtBr，这样电泳后的背景较低。配好的1.2%的甲醛变性胶先在1×甲醛变性胶电泳缓冲液中预电泳15min。RNA样品在5-10V/cm的电压降下电泳30min。图1是我们实验室用以上方法检测酵母总RNA的电泳图。图1酵母totalRNA的甲醛变性胶电泳。1，酵母totalRNA（0.3g）；2，酵母totalRNA（0.5g）；3，RNAMarker（0.2g）。RNA的质量判断标准是有清晰的2

7、6S，18S条带，无降解，且肉眼观察26S条带亮度约是18S的1-2倍你这个问题我也遇到过，因为我要做NORTHERNBLOT，所以前几个月一直摸方法。我的方法不和分子科隆上的完全一样，但肯定能得到很好的电泳图（我用手工提RNA）。我开始时跑胶后基本什么都没有，连降解都没看见，应该和你的情况一样吧，呵呵！以下是我的PROTOCOL，你可以试试，我的电泳图就很漂亮，可惜我不会上传图！我觉得你用EB染应该没有问题，但你那方法我没有试过，你可以直接加在胶里啊！至于甲醛只要是新的没有必要去离子化，但是如

8、果甲醛PH低于4的话，那就要处理一下，或换新的。方法：1．配制5X甲醛凝胶电泳缓冲液： 5X甲醛凝胶电泳缓冲液0.1mol/LMOPS(PH7.0)40mmol/L乙酸钠5mmol/LEDTA(ph8.0)将20.6g丙磺酸（MOPS）溶于800ml经用处理DEPC的50mmol/L的乙酸钠溶液。用2mol/L氢氧化钠将溶液的ph调至7.0，加10ml经用DEPC处理的0.5mol/LEDTA（ph8.0），再加经用DEPC处理的水至溶液总体积为1L。上述溶液经用0.2umol微孔虑膜过滤除菌，