瘦肉精的检测方法

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1、瘦肉精的检测方法1  测定原理“瘦肉精”克仑特罗竞争酶标免疫检测方法快速测定的基础是抗原抗体反应。酶联板的微孔包被有针对兔抗克仑特罗特异性抗体的羊抗体（第二抗体）。加入兔抗克仑特罗特异性抗体（第一抗体）与第二抗体结合而被固定，洗涤后加入标准液或样品溶液与酶结合物（酶标记抗原），标准液或样品中的游离抗原与酶标抗原竞争兔抗克仑特罗特异性抗体上有限的结合位点。通过洗涤除去没有与特异性抗体结合的酶标抗原，加入酶基质（过氧化脲）和发色剂（四甲基联苯胺）并孵育，结合到板上的酶标记物将无色的发色剂转化为蓝色的底物。加酸终止反应后，颜色

2、由蓝色转变为黄色。在单波长450nm处测吸光度，吸收光强度与样品中的克仑特罗浓度成反比。2  试剂盒的组成每个盒中（包括标准分析孔）材料如下：（1）1×96孔板（12排×8孔），包被有第二抗体（兔IgG抗体）；（2）6个标准液（300ul/瓶）为克仑特罗水溶液。浓度分别为0ng/kg、100ng/kg、300ng/kg、900ng/kg、2700ng/kg、8100ng/kg；（3）1个克仑特罗过氧物酶标记物浓缩液12ml（红色帽）；（4）1个克仑特罗抗体浓缩液12ml（黑色帽）；（5）1个酶基质/发色剂11ml（蓝色帽

3、）；（6）1个反应停止液，1mol/L硫酸14ml（黄色帽）；（7）1个缓冲液25ml，酶标记物及抗体浓缩液稀释用。3  试验材料3.1  设备微孔板酶标仪（450nm）、均质器、冷冻离心机、离心管（50ml）、微量可调移液器（单道、八道）、RIDAC18柱、滤纸（0.45μm）。3.2试剂甲醇（分析纯、100%）、50mmol/LHCL、10mmol/LHCL、50mmol/L磷酸二氢钾缓冲液（pH3.0）、500mol/L磷酸二氢钾缓冲液（pH3.0）、1mol/LNaOH。4  储存条件试剂盒保存于2-8℃，不要冷

4、冻。不用的微孔板放进原锡箔袋中并且与干燥剂一起重新密封。标准物质和无色的发色剂对光敏感，避免直接暴露在光线下。5  试剂变质的迹象发色剂有任何颜色表明已变质，应当弃之。0标准的吸光值小于0.6时，表示试剂可能变质。6  样品处理6.1　尿样尿样一般不用处理，取20清亮尿样直接测定。如果尿样混浊要过滤或离心至得到清亮尿样。6.2　肝脏、肉样粉碎的5g样品与25ml50mmol/LHCL混合，振荡1.5h，以达到均质的目的。称6g均质物（相当于1g肝脏），加入离心管中。10-15℃条件下（非常重要）4000转/min或更高的

5、转速离心15min。转移上清液到另一个离心管中，加300μl1mol/LNaOH混合15min。加入4ml500mmol/L磷酸二氢钾缓冲液（pH3.0），简单混合并在4℃保存至少1.5h或过夜（非常重要）。10-15℃条件下（非常重要）4000转/min或更高的转速离心15min。分离全部上清液（应是清亮的，非常重要），使其升至室温（20-24℃），然后用RIDAC18柱纯化。RIDAC18柱纯化样品必须在室温条件下（20-24℃），并严格控制过柱时流速。用3ml甲醇洗涤柱子，控制流速为1滴/s。用2ml洗涤液（50m

6、mol/L磷酸二氢钾缓冲液pH3.0），洗涤柱子。肝脏、肉样的全部上清液进柱，控制流速为1滴/4s。用2ml洗涤液（50mmol/L磷酸二氢钾缓冲液pH3.0），洗涤柱子，流速为1滴/s。用正压除去残留的流体并用空气或氮气吹2min，干燥柱子。用1ml甲醇洗脱样品，控制流速1滴/4s。在50-60℃并在弱空气或氮气流下完全蒸发甲醇溶剂。用1ml蒸馏水溶解干燥的残留物，取20μl进行分析。6.3饲料取10ｇ饲料样品，用10mmol/LHCL溶解，连续震荡10min，用滤纸过滤，在滤液中加入120μl1mol/LNaOH进行

7、中和，检查pH，用NaOH控制PH值在6.5-7.5之间，取上清液20μl进行分析。稀释倍数为25（即含有0.04g饲料样品/ml）。7  测定步骤第一步：所有试剂及样品在开始检测前必须回升至室温（20-24℃），测定操作在20-24℃下进行。第二步：用盒中缓冲液以体积1﹕10的比例稀释实际用量的克仑特罗抗体浓缩液（黑色盖），稀释前轻轻混均抗体，不要猛烈振荡。第三步：取出实验需要数量的微孔板条，足够标准和样品所用的数量，标准和样品做两个平行试验，记录标准和样品的位置。剩余的微孔板条放进原锡箔袋中并且与提供的干燥剂一起重新

8、密封，置于2-8℃冷藏。第四步：每个微孔中底部加100μl稀释后的抗体溶液，室温（20-24℃）孵育微孔板15min，避免光线照射。第五步：孵育的同时进行酶标记物的稀释，用盒中缓冲液以体积1﹕10的比例稀释实际用量的克仑特罗酶标记物浓缩液（红色盖），稀释前轻轻混均抗体，不要猛烈振荡，避光放置。第六步：洗板，甩出孔中液