抗生素管碟测定法

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抗生素管碟测定法2仪器与用具2.1操作室光线明亮，操作室应分为两部分，彼此分开，其中一部分为一般操作室，一部分为半无菌操作室。半无菌操作室应设有紫外线灭菌灯，并附设空气净化（空气净化级别为100级～10，000级）及空调设备，控制室温在20～25℃之间，达到无菌或半无菌状态。操作台应稳固，台面用玻璃板，并用水平仪调节至水平。注意操作，避免室内抗生素污染。2.2双碟内径约90mm，高16～17mm硬质玻璃或塑料培养平皿，碟底厚薄均匀，水平透明，无色斑气泡。碟底平度检查，可将双碟放在水平台上，下垫一张白纸，碟内加水2～3ml，再滴加蓝墨水，观察蓝色深浅是否一致。用过的双碟经高压灭菌倒出培养基后，置清洗液中浸泡过夜，冲洗，沥干，至150℃～160℃干热灭菌2小时或高压121℃蒸气灭菌30分钟，备用。2.3陶瓦盖内径约103mm，外径108mm，平坦，吸水性强，应定期清洗、干燥或干热灭菌。2.4钢管内径（6.0±0.1）mm，高（10.0±0.1）mm；外径（8.0±0.1）mm或（7.8±0.1）mm，每套钢管重量差异不超过±0.05g，内外壁及两端面光洁平坦，管壁厚薄一致。每次使用后应置1:

11000新洁尔溶液内，浸泡2小时以上，灭菌后再洗涤，先用水洗涤，超声波超声30分钟或用沾有去污粉的纱布条串擦内外壁，水冲洗，沥干，再用蒸馏水冲洗3次后，置带盖的容器内，在150℃～160℃干热灭菌2小时，备用。2.5钢管放置器有6孔和4孔两种。放置于无菌或半无菌室的操作平台上，钢管下落时应垂直平稳、位置正确。双碟升降平稳。应保持清洁，防止抗生素污染。可定期用75%乙醇棉擦拭落管筒及储管杯。置钢管的玻璃管应定期干烤灭菌。2.6恒温培养箱以隔水式为宜，温度平稳，波动小。设置漂移温度为35～37℃或24～26℃，依各品种要求而定，箱内网状隔板上放置带孔的玻璃板并调整水平。2.7灭菌刻度吸管用于吸取菌液及培养基。使用后应立即置5%石炭酸或1:1000新洁尔溶液中消毒后，再按玻璃容器的常规洗涤法洗涤。洗涤沥干后在吸口处塞入脱脂棉（松动，透气），置适宜容器中，在120℃以上干热灭菌2小时或121℃蒸气灭菌30分钟，烘干备用。2.8玻璃容器包括定量移液管、刻度吸管、容量瓶等，均应符合“常用玻璃量器国家计量检定规程”的规定。每次使用前用清洁液浸泡，水冲洗，并用蒸馏水或去离子说冲洗3次，沥干。2.9称量瓶重量在10g以下。用毕先用水冲洗、沥干，置清洁液浸泡2小时以上，然后分别用水、蒸馏水或去离子说冲洗3次，置洁净平皿中，在120℃干热灭菌3小时，待冷至60～70℃时，取出置于干燥中备用。2.10滴管用玻璃管拉制，管口光滑。使用前在清洁液浸泡，分别用水、蒸馏水后去离子水冲洗3次，置适宜容器中，在120℃

2干燥3小时后备用。2.11天平分析天平，精密度0.1mg，经计量检定。2.12抑菌圈直径（面积）测量仪应符合“抑菌圈测量仪检定规程”的规定。2.13游标卡尺精度0.05mm，长度125mm。2.14超净工作台有效工作面局部洁净度100级。用于试验菌的接种传代或菌悬液制备。超净工作台须置洁净工作室或半无菌室内。3试液3.1灭菌缓冲液制备缓冲液的试剂应为分析纯，配制后的缓冲液应澄明，分装于玻璃容器内，经121℃蒸气灭菌30分钟备用。3.1.1磷酸盐缓冲液（pH6.0）取磷酸氢二钾2g与磷酸二氢钾8g，加水使成1000ml，滤过。3.1.2磷酸盐缓冲液（pH7.0）取磷酸氢二钠（Na2HPO4·12H2O）9.39g与磷酸二氢钾3.5g，加水使成1000ml，滤过。3.1.3磷酸盐缓冲液（pH7.8）取磷酸氢二钾5.59g与磷酸二氢钾0.41g，加水使成1000ml，滤过。3.1.4磷酸盐缓冲液（pH10.5）取磷酸氢二钾35g，加氢氧化钾液，加水使成1000ml，滤过。4培养基配制培养基的各成分原料质量对抑菌圈边缘清晰度及试验结果影响较大，因此应对原材料进行预试验，挑选适当的品牌使用。制成的培养基不应有沉淀，如产生沉淀，可在配制培养基后，于115℃加热20分钟溶化，趁热用纸浆减压或适宜方法过滤，调整pH

3值，分装灭菌备用。中国药典2005年版二部附录的抗生素生物检定法中收载了13种不同处方的培养基及制备方法。目前，已有市售干燥培养基，使用方便。临用时按照使用说明进行配制，但应注意核对培养基的pH，必要时需调节pH，使其符合规定。另外，市售干燥培养基的质量也存在差异，注意选择合适的产品。5试验菌5.1菌种的复苏检定用标准菌种为冷冻干燥品，由中国药品生物制品检定所提供。5.1.1取冻干菌种管、灭菌1ml毛细滴管、双碟、镊子、营养肉汤培养基、营养琼脂斜面，移入接种室操作台或超净工作台。5.1.2将冻干菌种管外壁用碘酒（碘状）擦拭消毒，稍干，用75%乙醇棉球擦净，放在灭菌双碟内，待干。点燃酒精灯，将菌种管的封口一端在火焰上烧灼红热，用灭菌毛细滴管吸取营养肉汤培养基，滴在上述灼热的菌种管封口端，使其骤冷炸裂。5.1.3取灭菌镊子，在酒精灯火焰上方，将炸裂的管口打开，放入灭菌双碟内，另取1支灭菌毛细滴管，在火焰旁吸取营养肉汤少许，加至菌种管底部，将冻干菌块搅动是其溶解，随即吸出管内菌液，分别接种至营养琼脂斜面及普通肉汤内，并将毛细滴管及菌种管投入消毒液内，将已接种的营养琼脂斜面置35～37℃培养22～24小时。5.1.4

4取出培养物，仔细观察菌苔形态、有无杂菌，涂片并进行革兰氏染色镜检，如呈典型菌落，则转种3代即可使用。菌落不典型时，可进行平板分离单菌落。5.2菌种的接种与保存5.2.1准备需用的培养基，培养基应新鲜制备，如斜面已无冷凝水者，不宜再使用。在标签上注明菌名及接种日期。从冷藏箱中取出菌种斜面后，应在室温放置约30分钟，待温度平衡后再移入接种室或超净工作台。5.2.2点燃酒精灯或煤气灯等，左手握住菌种斜面，将管口靠近火焰上方，右手拿接种棒后端，将接种环烧红约30秒种，随后将接种棒金属部分在火焰上烧灼，往返通过3次。右手用无名指、小指及掌部夹住管塞，左手将管口在火焰上旋转烧灼，右手再轻轻拔开管塞，将接种环伸入管内先在近壁的琼脂斜面上靠一下，稍冷却再移至菌苔上，刮取少量菌苔，随即取出接种棒，并将菌种管口移至火焰上方。塞上管塞，左手将菌种管放下，取营养琼脂斜面1支，照上述操作打开管塞，将接种环伸入管内至琼脂斜面的底部，由底向上，将接种环轻贴斜面的表面曲折蛇形移动，使细菌接种在斜面的表面上。5.2.3取出接种环，在火焰上方将培养基管盖上塞子，然后将接种过细菌的接种环在火焰上烧灼灭菌。5.2.4将已接种的细菌管置35～37℃培养22～24小时，霉菌管一般置24～25℃霉菌培养箱内培养7天。培养后放入4℃冷藏箱内保存，一般1～3个月转种一次。5.3菌悬液的制备5.3.1枯草芽孢杆菌[BacillussubtilisCMCC（B）63501]悬液

5取枯草芽孢杆菌工作用菌种营养琼脂斜面培养物，加灭菌水1～2ml将菌苔洗下，制成悬液，用吸管将此悬液接种至盛有营养琼脂培养基的扁培养瓶内，均匀摊布，在35～37℃培养7天。取菌苔少许涂片，革兰氏染色镜检，应有芽孢85%以上，用灭菌水10ml将芽孢洗下，制成芽孢悬液，合并至灭菌大试管内，在65℃水浴中加热30分钟将菌体杀死，待冷后置4℃冷藏箱贮藏。此菌液为浓菌液。日常试验用菌液取上述浓溶液，用灭菌水1:3稀释至灭菌试管中，冷藏箱保存备用。5.3.2短小芽孢杆菌[BacillussubtilisCMCC（B）63202]悬液取短小芽孢杆菌工作用菌种营养琼脂斜面培养物，照上述方法制备芽孢悬液。5.3.3金黄色葡萄球菌[StaphylococusaureusCMCC（B）26003]悬液取金黄色葡萄球菌工作用菌种营养琼脂斜面培养物，用接种环取菌苔少许接种至营养琼脂斜面上，在35～37℃培养22～24小时，临用时，用灭菌水将菌苔洗下，制成悬液。置4℃冷藏箱保存，可使用3天。5.3.4藤黄微球菌[MicrococcusluteusCMCC（B）28001]悬液取藤黄微球菌工作用菌种营养琼脂斜面培养物，用1ml培养基Ⅲ将菌苔洗下，用吸管移至盛有营养琼脂培养基的扁培养瓶中，均匀摊布，将培养瓶倒置于培养箱中26～27℃培养24小时取出，用吸管吸取培养基Ⅲ或0.9%灭菌氯化钠溶液5ml至培养瓶中，将菌苔洗下，合并菌液至灭菌大试管中备用。置4℃冰箱中保存，可使用1～2个月。

65.3.5大肠杆菌[EschehchiacoliCMCC（B）44103]悬液取大肠杆菌工作用菌种营养琼脂斜面培养物，照金黄色葡萄球菌菌悬液项下的方法制备菌悬液，供当日使用。5.3.6肺炎克雷伯氏菌[KlebosiellapneumoniaeCMCC（B）46117]悬液取肺炎克雷伯氏菌工作用菌种营养琼脂斜面培养物，照金黄色葡萄球菌菌悬液项下的方法制备菌悬液，供当日使用。5.3.7啤酒酵母菌[Saccharomycescerevisiae9736]悬液取啤酒酵母菌的V号培养基琼脂斜面培养物，用接种环取菌苔少许接种于Ⅳ号培养基斜面上，在32～35℃培养24小时，用灭菌水将菌苔洗下，放至含有灭菌玻璃珠的试管中，振摇均匀，以当日使用为宜。试验菌的菌龄对抑菌圈边缘清晰度有一定影响，应保持菌种新鲜。对易变异的菌株如藤黄微球菌等，宜在制备菌液前进行单菌落的分离，选择典型菌落以保持菌悬液中菌群的一致性，以使所得的抑菌圈边缘清晰、整齐。6操作法6.1称量6.1.1称量前先将标准品从冰箱中取出，使其温度与室温平衡。6.1.2供试品与标准品的称量应使用用一架天平；对于吸湿性较强的抗生素，应在称量前1～2小时更换天平内干燥剂。6.1.3标准品与供试品的称量尽量一次取样称取，不得将已取出的称取物倒回原容器内。标准品的称取量不得少于20mg，取样后立即将盛有样品的称量瓶或适宜的容器用盖盖好，以免吸水。

7称样量的计算：W=V·CP式中W为需称取标准品或供试品的重量（mg）；V为溶解标准品或供试品制成浓溶液时用容量瓶的体积（ml）；C为标准品或供试品浓溶液的浓度（u/ml或µg/ml）；P为标准品的纯度或供试品的估计效价（u/mg或µg/mg）。6.2稀释稀释操作应遵照容量分析的操作规程进行。6.2.1用于溶解及稀释标准品或供试品的容量瓶和移液管等玻璃量器，应按“常用玻璃量器国家计量检定规程”进行标定，符合A级的要求。每步稀释，量取量不得少于2ml，稀释步骤一般不超过3步。举例：量取贮备液（1000u/ml），进行以下稀释。50ml量瓶，稀释至刻度第一步精密量取5ml（1000u/ml）100u/ml50ml量瓶，稀释至刻度第一步精密量取5ml（1000u/ml）10u/ml（H）100ml量瓶，稀释至刻度第一步精密量取5ml（1000u/ml）5u/ml

8（L）6.2.2量取供试品溶液尽量使用刻度移液管，正式量取前要用供试液流洗2～3次，吸取供试溶液后，用滤纸将外壁多余液体拭去，从起始刻度开始放溶液。6.2.3标准品溶液和供试品溶液应使用同一缓冲液（溶剂）稀释，以避免因pH或浓度不同而影响测定结果。6.2.4稀释时，每次加液至接近量瓶刻度前，稍放置片刻，待瓶壁的液体完全流下，再准确补加至刻度。6.2.5二剂量（2.2）法的标准品溶液及供试品溶液高、低浓度之比为1:0.8。但所选用的浓度必须在剂量反应直线范围内。6.3双碟制备6.3.1双碟的制备应在半无菌室或洁净室内进行，并注意避免微生物及抗生素的污染。培养基应在水浴中或微波炉内融化，避免直火加热。6.3.2底层用灭菌大口20ml吸管或其他灭菌分装器，吸取已融化的培养基20ml注入双碟内，待凝固后更换干燥的陶瓦盖，放置于35～37℃培养箱中保温，使菌层易于摊布。6.3.3菌层取出试验用菌悬液，按预试好的加菌量[（2.2）法标准品溶液的高浓度所致的抑菌直径在18～22mm，（3.3）法标准品溶液的中心浓度所致的抑菌圈直径在15～18mm

9]，用灭菌吸管吸取悬液适量，加入已融化并保温在水浴中（水浴温度，细菌为48～50℃。芽孢可至60℃）的培养基内，摇匀，作为菌层培养基用。取出加有底层培养基的双碟，用灭菌大口5ml、10ml吸管或其他适宜分装器，吸取菌层培养基5ml，加于底层培养基上，使其均匀摊布，用干燥陶瓦盖覆盖，放置20～30分钟，待凝固。6.3.4放置钢管用钢管放置器，将灭菌的钢管放入贮管筒（杯）内，按说明书的要求操作，使钢管平稳地落在培养基上，注意使各钢管下落的高度基本一致。如无钢管放置器，可用小眼科镊子夹持钢管，轻轻地放置在培养基上，相应剂量的钢管对角均匀放置。钢管放妥后，应使双碟静置5～10分钟，钢管在琼脂上沉稳后，再开始滴加抗生素溶液。6.4滴加抗生素溶液6.4.1每批供试品取不少于6个双碟，滴加溶液用灭菌毛细滴管或微量加样器（调节加样量约为200～300µl），在滴加之前须用溶液洗2～3次。6.4.2滴加标准品及供试品溶液顺序，因实验设计方法不用而异。（2.2）法，在双碟的4个钢管中分别成“Z”字形滴加标准品（S）及供试品（T）高（H）、低（L）两种浓度的溶液，即滴加溶液的顺序为SH－TH－TL－SL；（3.3）法的6个钢管中间隔3个钢管中分别滴加标准品及供试品高（H）、中（M）、低（L）3种浓度溶液，并使相同浓度成对角，滴加顺序为SH－TH－SM－TM－SL－TL。

10滴加溶液至钢管口平满，注意滴加溶液的间隔不可过长，否则因钢管内溶液的扩散时间不同会影响测定结果。6.4.3每份滴加的溶液为同一单位，但双碟数每次不超过5个，如果1份溶液滴加双碟数目多，可分次滴加。每种溶液各用1支毛细滴管。6.4.4滴加完毕，用陶瓦盖覆盖双碟，平稳置于双碟托盘内，双碟叠放不可超过3层，以免受热不均，影响抑菌圈大小。将双碟托盘水平平稳地移入培养箱中间位置，在35～37℃或该药品标准规定的温度下培养至所需时间。6.5抑菌圈测量6.5.1将培养好的双碟取出，拿掉陶瓦盖，将钢管倒入盛有1:1000新洁尔灭（苯扎溴铵）溶液或其他消毒液内灭菌，换以玻璃盖；测量抑菌圈前，应检查抑菌圈是否圆整，如有破圈或圈不圆整，应舍弃该碟，切忌主观挑选双碟或抑菌圈，以免造成测定结果的偏倚。6.5.2测量抑菌圈可以使用抑菌圈测量仪，也可用游标卡尺；使用的抑菌圈测量仪应经过检定，并符合检定规程的要求，操作时应按仪器的操作规程进行：使用游标卡尺测量时，眼睛视线应与读数刻度垂直，用卡尺的尖端与抑菌圈直径的切点成垂直方向测量。7记录与计算7.1记录试验记录应包括抗生素药品名称、规格、批号、生产厂、检查编号、检查依据、检验日期、温度、相对湿度、标准品名称、标准品批号、标准品来源及标准品标示含量、试验菌名称及菌悬液浓度、培养基名称、来源及批号、缓冲液名称及pH

11、供试品估计效价、抑菌圈测量仪型号及编号、标准品与供试品的称量、稀释步骤、试验人与校核人、抑菌圈测量及数据处理结果。当用游标卡尺测量抑菌圈直径时，应将测得数据按相应剂量浓度以列表形式记录。用测量仪测量抑菌圈面积或直径时，应将仪器的测量、数据处理、统计分析及计算结果打印后贴附于记录页上。7.2计算7.2.1二剂量法（2.2法）效价计算公式P=log-1[T2+T1－S2－S1=I]×100%T2+S2－T1－S1式中P为供试品效价（相当于标示量或估计效价的百分数）；S2为标准品高浓度溶液所致抑菌圈直径（或面积）的总和；S1为标准品低浓度溶液所致抑菌圈直径（或面积）的总和；T2为标准品高浓度溶液所致抑菌圈直径（或面积）的总和；T1为标准品低浓度溶液所致抑菌圈直径（或面积）的总和；I为高、低剂量之比的对数值，2:1时，I=0.301。4:1时，I=0.602。举例乳糖酸红霉素效价测定结果计算（见表1）表1抑菌圈面积测量结果抑菌圈面积碟数S1S2T2T1

12115711276158112682148111991523117331523130214971263415181214153312265157312371543126861546121915801224714951260152612408153012371548126391605125615931293101649127216081320∑15491124721553212528估计效价（AT）=603u/mg剂距（I）=0.301P=log-1[15532+12528-15491-12472×0.301]×100%=101.1%15491+15532-12472-12528效价（PT）=P×AT=603u/mg×101.1%=609.8u/mg7.2.2三剂量法计算公式P=log-1[0.1292（T3+T2+T1－S3－S2－S1）]×100%S3+T3－S1－T1式中S3为标准品高浓度所致抑菌圈直径（或面积）的总和；S2为标准品中间浓度所致抑菌圈直径（或面积）的总和；

13S1为标准品低浓度所致抑菌圈直径（或面积）的总和；T3为供试品高浓度所致抑菌圈直径（或面积）的总和；T2为标准品中间浓度所致抑菌圈直径（或面积）的总和；T1为标准品低浓度所致抑菌圈直径（或面积）的总和；I为高、低浓度剂量之比的对数值，1:08时，I=0.0969。举例新霉素效价测定结果计算（见表2）。表2抑菌圈直径测量结果抑菌圈直径碟数S1S2S3T1T2T3116.0516.2016.5015.8016.3516.60216.2016.4516.6516.2016.4516.70316.0016.4516.7016.0516.3516.70415.9516.3516.6016.0016.2516.60515.7016.2516.6015.8516.2516.60615.5516.2016.5515.7016.2016.60715.6516.2016.4015.8016.1516.40815.9016.1016.4515.8016.1016.50915.6016.0016.3015.7015.9516.30∑142.60146.20148.75142.90146.05149.00估计效价（AT）=670u/mg剂距（I）=0.0969P=log-1[0.1292（142.9+146.05+149.00-142.6-146.2-148.75]×100%

14148.75+149.00-142.6-142.9P=101.1%效价（PT）=P×AT=101.1%×670u/mg=676.7u/mg8结果判定8.1可靠性测验管碟法系根据量反应平行线原理而设计，并要求在试验所用的剂量（浓度）范围内，对数剂量（浓度）与反应呈直线关系。可靠性测验即通过对剂间变异的分析，以测验标准品和供试品的对数剂量与反应的关系是否显著偏离平行直线。（2.2）法的剂间变异分析为试品间、回归和偏离平行三项；（3.3）法还需再分析二次曲线和反向二次曲线，如用游标卡尺测量抑菌圈直径，可用（2.2）法和（3.3）法的专用数据处理软件对测量数据进行统计学处理和结果计算。用抑菌圈测量仪测量抑菌圈时，测量与统计学处理一次完成，统计学分析按药典附录的生物检定统计法进行F的显著性测验。（2.2）法要求直线回归和剂间要非常显著（P<0.01），偏离平行不应显著（P>0.05）；（3.3）法除（2.2）法的上述规定外，尚需考察二次曲线和反向二次曲线，且二者均应不显著（P>0.05），符合以上各项规定后，才能认为试验结果可靠，方可进行效价和可信限率计算。8.2可信限率考核试验的精密度。除药典各论另有规定外，管碟法的可信限率不得超过5%。上述各项都能符合者，试验结果成立。8.3试验计算所得效价低于估计效价的90%或高于估计效价的110%，则检验结果仅作为初试，应调整供试品估计效价，予以重试。

158.4原料药效价测定一般需做双份样品平行试验，以使核对。对于检验结果不符合规定的样品，应有可靠性测验及可信限率均符合规定，且测定结果在估计效价（原料药）或标示量（制剂）±10%范围内的至少2个效价测定结果，必要时应请其他检验人员复核，才能发出检验报告。8.5效价测定结果的有效数字按药典规定及数字的原则取舍。9操作要点9.1抗生素原料药不含辅料的药物制剂原料，一般其效价以纯度（u/mg或µg/mg）表示。检验时，可参考该品种的药品标准纯度限度规定或厂方提供的纯度估计效价，取样试验，如估计效价与实际效价相差较远时，即测定所得效价超出估计效价的±10%时，则重新估计效价，再做准确测定。原料药一般皆以干燥品或无水物折算效价，须先测其含水或未折干效价，再根据供试品的水分或干燥失重测定结果折算成无水物或干燥品的效价。干燥品或无水物效价（u/mg）=湿品（或未折干品）效价（u/mg）1-供试品干燥失重或水分%9.2抗生素制剂9.2.1粉针剂指注射用无菌粉末或冻干品，用西林瓶橡胶塞铝盖封装或熔封在安瓿内，一般测定其纯度（u/mg或µg/mg）或整瓶效价。取装量差异项下的内容物，称取适量（50mg以上，根据标示量及平均装量折算估计效价，并按估计效价及量瓶体积计算取样量），置量瓶中，加标准中规定的溶剂溶解，稀释，测定，计算出1mg

16的效价单位数，再根据平均装量及标示量计算平均每瓶的百分含量。9.2.2水针剂（注射液）即抗生素的灭菌水溶液，标示量一般按每毫升含效价单位计。效价测定时，量取平均装量项下的内容物或5～10支的内容物，混匀，用干燥的刻度吸管吸取一定量的供试品，将吸管外壁用滤纸拭净，再弃去多余的溶液，使供试品至吸管刻度，沿量瓶颈部内壁缓缓流放入已盛有一定量溶剂（以免抗生素结晶析出）的量瓶内，混匀，继续加溶剂至刻度，摇匀，再量取适量稀释至规定的浓度。9.2.3片剂包括素片、薄膜衣片、糖衣片及肠溶片。素片、薄膜衣片称取20片的总量，求出平均片重，研细混匀后，精密称取适量（约相当于1片的重量或根据标示量按平均片重及所用量瓶体积折算取样量），置量瓶中，用标准中规定的溶剂溶解，并稀释至刻度，摇匀。再量取适量稀释至规定浓度。注意点：研磨时应注意环境干燥，可在干燥操作柜内操作，研磨要迅速，避免吸湿，因片剂内含辅料较多，辅料可能漂浮于溶液表面，稀释时量取供试溶液应读取辅料下层的溶液切面；如沉淀较多，须待其下沉后再量取上层液；有些辅料吸附抗生素，应加以注意。为节约供试品，可与重量差异检查结果进行。糖衣片、肠溶片取标准中规定的片数，置于乳钵中，研细，分次加入规定的溶剂，研磨使其溶解，将研磨液转移至瓶口放有小漏斗的量瓶中，量瓶体积根据供试品标示量、所取片数及抗生素储备液浓度（一般为1000单位/ml

17）选定，用规定溶剂稀释至刻度，摇匀，静置，使辅料下沉而抗生素已溶解在溶液内，精密吸取量瓶中的上层液适量，作进一步稀释。个别品种标准如同时收载了糖衣片和薄膜衣片，可能规定薄膜衣片也取整片制备供试品溶液。9.2.4胶囊剂取装量差异项下的内容物，混合均匀，研细，根据平均装量，精密称取约相当于1粒胶囊的量或按标示量、量瓶体积及抗生素储备液浓度等计算的取样量，置于量瓶中，加规定的溶剂溶解并稀释至刻度，摇匀，如供试品含有较多的辅料，则照片剂项下的方法进行。9.2.5颗粒剂、干混悬剂取装量差异项下的内容物，混匀，根据平均装量，精密称取约相当于1袋（包）的量或按标示量、量瓶体积及抗生素储备液浓度等计算的取样量，置于量瓶中，加规定的溶剂溶解并稀释至刻度，摇匀。量取适量稀释制成供试品溶液。测得效价后，再根据装量差异项下的平均装量，计算出平均每袋（包）的效价，根据标示量即可算出含量。9.2.6软膏剂、眼膏剂擦净软膏剂或眼膏剂软管的外壁，切开封口，置于干燥器内约1小时，取干燥的洁净分液漏斗，带手套操作，将膏剂软管连同内容物在天平上称重，取出，将内容物挤入分液漏斗，量约2g

18，再称取膏剂软管的重量，按减重法以前后称量之差计算分液漏斗内膏剂供试品的量，以不号过氧化物的乙醚或石油醚等作溶剂溶解基质，但基质中抗生素则应不溶于或几乎不溶于该有机溶剂中，以避免提取过程中抗生素的损失。按标准中的规定加提取溶剂至分液漏斗中，振摇，使基质溶解，用规定的缓冲溶液提取抗生素至说相中，用缓冲溶液提取3次，合并3次的提取液，置量瓶中，加缓冲溶液至刻度，摇匀，量取适量稀释至规定的浓度，滴加双碟，培养，测量抑菌圈，数据处理，可靠性测验及可信限率判断，计算效价。抗生素微生物比浊法10仪器与用具10.1操作室要求同管低法10.2分光光度计应有数字显示功能和自动记录装置，数显精度应在小数点后三位。10.3玻璃大试管20.5mm×2.5mm或适宜的试管，应大小一致，厚薄均匀，玻璃质地相同，使用同一品牌和批号。使用过的试管经灭菌后，将培养基倾出，用水清洗，沥干，再用硫酸－重铬酸钾洗液浸泡，清水冲洗干净后，晾干，在160℃干烤2～3小时灭菌，保持洁净，备用。注意避免污染毛点、纤维等，以免干扰测定结果。10.4移液管10ml或20ml刻度容量，管口需磨粗（大），以便快速分装培养基。10.5恒温水浴箱工作体积600mm×300mmmm×150mm（长×宽×高）。电热恒温水浴。10.6电动搅拌器将二台电动搅拌器的桨叶置于恒温水浴的大试管随机区组培养方列的两侧，于水中搅动，以使水温均匀。本身带有搅拌或循环水系统的恒温水浴箱，可不再配备电动搅拌器。10.7分光光度计用吸收池方形玻璃吸收池或石英吸收池，透光面1cm，用硝酸－硫酸混合液（取浓硫酸95ml，加浓硝酸3～5ml

19，混匀）浸泡1～48小时（浸泡时间视是否能去除附着污物而定），先后用水、去离子水（蒸馏水）冲洗干净，晾干，备用。如仍不能除去附着污物，可用1%～2%硝酸钠的浓硫酸溶液浸泡后，再经水洗涤。10.8其他分析天平、称量瓶、量瓶、25ml及50ml滴定管、秒表、滤纸及镜头纸等。11试管除同管碟法的要求外，比浊法用的缓冲液应澄清无色，缓冲液配制后用垂熔玻璃漏斗滤过，除去沉淀等不溶物，使溶液澄清。使用前灭菌。12培养基除同管碟法的要求外，比浊法使用的培养基应澄清，颜色以尽量浅为佳，培养后培养基本身不得出现浑浊。培养基经灭菌后不得发生沉淀。根据这一原则，通过对培养基原材料的预试，挑选合适品牌厂家的产品使用。目前，已有一些种类的市售干燥培养基，如营养琼脂培养基，改良马丁培养基等，使用方便。13试验用菌液13.1金黄色葡萄球菌（Staphylococusaureus）悬液取金黄色葡萄球菌[CMCC（B）26003]的营养琼脂斜面培养物，接种于营养琼脂斜面培养基上，在35～37℃培养20～22小时。临用时，用灭菌水或0.9%灭菌氧化钠溶液将菌苔洗下，备用。13.2大肠杆菌（Eschehchiacoli）悬液取大肠杆菌[CMCC（B）44103]的营养琼脂斜面培养物，接种于营养琼脂斜面培养基上，在35～37℃培养20～22小时。临用时，用灭菌水将菌苔洗下，备用。13.3白色念珠菌（Candidaalbicans）悬液取白色念珠菌[CMCC（F）98001]的改良马丁琼脂斜面的新鲜培养物，接种于10ml培养基Ⅸ

20（中国药典2005年版二部附录ⅪA抗生素微生物检定法）中，在35～37℃培养8小时，再用培养基Ⅸ稀释至适宜浓度，备用。14操作方法14.1称量要求同管碟法。14.2稀释标准品与供试品溶液的稀释应使用经标定的量瓶，每步稀释的量取量以不少于2ml为宜，稀释步骤一般不超过3步。14.3标准曲线法14.3.1标准品溶液按中国药典该品种含量测定项下的要求，制成一定浓度的标准品贮备液。在该品种项下规定的剂量反应线性范围内，以线性浓度范围的中间值作为中间浓度，标准品溶液选择5个剂量，剂量间的比例应适宜（通常为1:1.25或更小）。14.3.2供试品溶液根据估计效价或标示量，取供试品按标准品溶液的制备方法，选择中间浓度，不少于3个试管。14.3.3含试验菌液体培养基的制备临用前，取规定的试验菌悬液适量（35～37℃培养3～4小时后测定的吸光度在0.3～0.7之间），加入到各液体培养基管中，混合均匀，使在试验条件下能得到满意的剂量－反应关系和适宜的测定浊度（吸光度）。含试验菌液体培养基在配制后应立即使用，必要时可适当冷却，以防止试验菌在培养前生长。14.3.4线性试验取适宜的大小厚度均匀的已灭菌试管，再各个试管内分别精密加入各个浓度的标准品和供试品溶液各1.0ml，再精密加入含试验菌的液体培养基9.0ml

21，立即混匀，按随机区组分配将各个试验管放置于恒温水浴内，在规定的条件下培养（通常约4小时）至适宜测量的浊度值（吸光度值）。各浓度不少于4个试管。14.4平行线测定法（二剂量（2.2）和三剂量（3.3）法）14.4.1标准品溶液按中国药典该品种含量测定项下的要求，制成一定浓度的标准品贮备液。在该品种项下规定的剂量反应线性范围内，选择2个或3个剂量，剂量间的比例应适宜（二剂量通常为2:1或4:1，三剂量通常为1:0.8）。14.4.2供试品溶液根据估计效价或标示量，取供试品按标准品溶液的制备方法，选择2个或3个剂量。14.4.3含试验菌液体培养基的制备同14.3.3配制方法。14.4.4标准品及样品测定取适宜的大小厚度均匀的已灭菌试管，在各个试管内分别精密加入2个或3个浓度的标准品和供试品溶液各1.0ml，再精密加入含试验菌的液体培养基9.0ml，立即混匀，按随机区组分配将各管在规定条件下培养至适宜测量的浊度值（通常约为4小时）。各浓度不少于4个试管。14.5空白试验另取2支试管各加入药品稀释剂1.0ml，再分别加入含试验菌的液体培养基9.0ml，其中在一支试管中立即加入12%甲醛溶液0.5ml，混匀，作为空白对照，另一支试管同法培养作为试验菌生长对照。14.6吸光度的测量在线测定各试管的吸光度，或取出试管立即加入12%甲醛溶液0.5ml以终止微生物的生长，在530nm或580nm波长处测定各管的吸光度。15记录与计算15.1试验记录要求与管碟法相同。

2215.2标准曲线法15.2.1效价计算按下式计算的标准曲线的斜率b和截距a，从而得到相应的标准曲线行性方程。斜率（b）=∑（x－ⅹ）∑（y－y）∑（x－ⅹ）2截距（a）=y－bx标准曲线线性方程Y=bX＋a式中x为抗生素标准品溶液的浓度或浓度的数学转换值；X为抗生素标准品溶液的浓度或浓度的数学转换值的平均值；y为各标准品溶液的吸光度；y为标准品溶液吸光度的平均值。计算各浓度试管供试品溶液吸光度的平均值，自标准曲线上或按标准曲线的线性方程，求得抗生素的量，再乘以供试品溶液的稀释度，即得供试品中抗生素的效价含量。15.2.2回归系数的显著性检查判断回归得到的方程是否成立，即X、Y是否存在着回归关系，可采用t检验。X、Y应具有直线回归关系。15.2.3可信限率考核试验的精密度，除药典各论另有规定外，本法的可信限率不得超过5%。上述各项规定都能符合者，试验结果成立。15.3平行线测定法15.3.1效价计算15.3.1.1二剂量（2.2）法效价计算公式

23P=log-1[T2＋T1－S2－S1）×I]×100%T2＋S2－T1－S1式中P为供试品效价（相当于标示量或估计效价的百分数）；S2为标准品高浓度溶液所致吸光度的总和；S1为标准品低浓度溶液所致吸光度的总和；T2为标准品高浓度溶液所致吸光度的总和；T1为标准品低浓度溶液所致吸广度的总和；I为高、低剂量之比的对数值，2:1时，I=0.301。4:1时，I=0.602。15.3.1.2三剂量（3.3）法效价计算公式P=log-1[0.1292（T3+T2+T1－S3－S2－S1）]×100%S3+T3－S1－T1式中S3为标准品高浓度所致吸光度的总和；S2为标准品中间浓度所致吸光度的总和；S1为标准品低浓度所致吸光度的总和；T3为供试品高浓度所致吸光度的总和；T2为标准品中间浓度所致吸光度的总和；T1为标准品低浓度所致吸光度的总和；I为高、低浓度剂量之比的对数值，1:08时，I=0.0969。15.3.2可靠性测验计算方法及要求同管碟法二剂量（2.2）和三剂量（3.3）法。即（2.2）法，回归、剂间P<0.01，偏离平行P>

240.05。（3.3）法，除符合（2.2）法的要求外，二次曲线、反向二次曲线P>0.05。15.3.3可信限率其可信限率除另有规定外，应不大于5%。上述各项规定都能符合者，试验结果成立。15.4实验计算所得效价低于估计效价的90%或高于估计销假的110%，则检验结果仅作为初试，应调整供试品估计效价，予以重试。15.5原料药效价测定一般需做双份样品平行试验，以使核对。对于检验结果不符合规定的样品，应有可靠性测验及可信限率均符合规定，且测定结果在估计效价（原料药）或标示量（制剂）±10%范围内的至少2个效价测定结果，必要时应请其他检验人员复核，才能发出检验报告。15.6效价测定结果的有效数字按药典规定及数字修约的原则取舍。