动物实验基本操作技术

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1、动物实验基本操作技术实验动物的捉拿和固定方法实验动物的给药方法实验动物的麻醉方法实验动物的编号方法实验动物的去毛方法实验动物的取血方法实验动物的处死方法一、实验动物的捉拿和固定方法1.小鼠捉拿时先用右手将鼠尾抓住提起，放在较粗糙的台面或鼠笼上，在其向前爬行时，右手向后拉尾，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和头颈部皮肤，将其固定于左手手心中，拉直四肢并用左手无名指压紧尾和后肢，右手即可作注射或其他实验操作。取尾血及尾静脉注射时，可将小鼠固定在金属或木制的固定器上。2.家兔一手抓住兔颈部的被毛与皮肤，另一手托其臀部或腹部，使其躯干的重量大部分集中在手

2、上。兔手术固定台二、实验动物的给药方法1.注射法给药：家兔耳缘静脉注射大、小鼠尾静脉注射2.摄入法给药：家兔、大鼠、小鼠灌胃法3.涂布法给药摄入法给药自动口服给药强制灌胃给药：大鼠小鼠家兔经直肠给药小鼠、大鼠灌胃法器械：灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。小鼠灌胃针长4～5cm直径1mm大鼠灌胃针长6～8cm直径1.2mm小鼠灌胃法按正确方法用左手抓取和固定动物。使腹部朝上，颈部拉直。固定后，右手持持接灌胃针的注射器吸取药液（或事先将药液吸好），将针头从口角插入口腔内，然后用灌胃针头压其头部，使口腔与食管成一直线，再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入，转

3、动针头刺激动物吞咽，然后沿咽后壁慢慢插入食道。若动物挣扎厉害，应退出后灌胃针，待动物安静后重新插入。切不可强行插入，以免损伤食道或误入气管导致动物死亡。当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压说明灌胃针未插入气管，此时可将药液灌入。成年小鼠插管深度一般是：3cm小鼠灌胃量：0.1～0.25ml/10g体重大鼠灌胃法成年大鼠插管深度一般是：5cm大鼠灌胃量：1～2ml/100g体重兔灌胃法器械：灌胃管（特制胃管或导尿管）开口器（木质纺锤状）兔灌胃法操作方法：1.固定：动物取直立或平卧体位，固定动物头部。直立位需2人合

4、作，一人取坐位，将兔的躯体和下肢夹在两腿之间，左手紧握双耳固定头部，右手抓住前肢，将兔固定于竖立体位。另一人将开口器横放于兔口中，让动物咬住开口器，即可开始插入灌胃管。兔灌胃法操作方法：2.插管：将灌胃管由开口器的中央孔插入，沿上颚壁推进约15cm。插管过程中可将灌胃管的另一端放于一杯清水中，若连续有气泡，说明插入呼吸道，应立即拔出灌胃管，重新操作；若无气泡，说明没有插入气管，即可开始注药。沿上颚壁推进约15cm检查插入部位兔灌胃法操作方法：3.给药：灌注药后可用少量清水将灌胃管里的药全部冲入胃内，以保证灌入药的剂量准确。灌胃完毕后，先退出胃管

5、，后退出开口器。兔灌胃法关键词：固定，插入（沿上颚壁），检查家兔耳缘静脉注射将动物固定于实验台上，剪去耳缘部位的被毛，用乙醇轻轻擦拭，耳缘静脉即清晰可见。用左手食指和中指夹住静脉近心端，拇指和小指夹住耳缘部分，以左手无名指和小指放在耳下作垫，待静脉充盈后，右手持注射器使针头尽量由静脉远心端刺入，顺血管方向平行、向心端刺入约1cm。注射完毕抽出针头，用棉球压迫注射部位数分钟，以免出血。三、实验动物的麻醉方法全身麻醉法：吸入法，注射法局部麻醉法：浸润麻醉，表面麻醉（一）全身麻醉法1、吸入法麻醉药：乙醚氯仿三氟乙烷2、注射法麻醉药：巴比妥类药物氯胺酮

6、乌拉坦水合氯醛（一）全身麻醉法（二）局部麻醉法1%盐酸普鲁卡因局部浸润麻醉0.02～2％盐酸可卡因表面麻醉麻醉药物应用原则：依据动物体重计算麻醉药物的剂量；依据动物生命体征变化控制给药速度；掌握宁少勿多、分阶段给药的方式。针对不同的动物，选择不同的麻醉药物、实施不同的麻醉方法。麻醉具体操作：家兔全身麻醉麻醉剂：1.5%戊巴比妥钠，2ml/kg前1/2快速推入，使动物能顺利、快速地渡过兴奋期；后1/2速度宜慢，且边注射边注意观察动物的生命体征变化，当确定已达到麻醉效果时，即停止给药，不必急于将剩余的麻醉药物全部推入。给药方法：耳缘静脉注射麻醉成功

7、标志角膜反射迟钝或消失肢体肌肉松弛疼痛反射消失呼吸变深变慢机能实验学常用手术方法一、常用手术器械二、常用手术插管技术气管插管术颈动脉插管术颈静脉插管术动物实验常用手术器械粗剪用于蛙类实验中的剪骨、肌肉和皮肤等粗硬组织以及家兔等实验动物的剪毛。剪毛时，剪毛剪自然落下逆毛方向一次次将毛剪下即可，加力下压或一手提起被毛，均易剪破皮肤。剪下的毛应集中放入加有清水的污物盒内，避免到处飞扬。手术剪用于剪线和剪开、分离组织。有直、弯、尖头、圆头、大、小之分，根据不同用途选用。手术操作中用于沿组织间隙进行分离和剪断组织者称组织剪，一般为弯形，尖端较钝圆；用于剪

8、断缝扎线、引流物或敷料等用品者称剪线剪，为直形。眼科剪主要用于剪血管或神经等柔软组织，眼科剪也有直头与弯头之分，正确的执剪姿势与手术剪相同，即用拇指与