实验基本操作

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1、精品文档，仅供学习与交流，如有侵权请联系网站删除实验基本操作一：容量瓶  凡要求准确配制一定浓度的溶液时必须使用容量瓶。容量瓶的容量有大有小，均在瓶上标出（如50ml、500ml等）。瓶颈上有一刻度线，表示当液体加到此刻度时就相当于瓶上所标容量。瓶上并标有温度，通常为20℃，表示瓶上所标容量是在20℃时的容量。室温不在20℃时，容量将会有所增减。配制溶液时，先将溶质在烧杯中用少量溶剂溶解，再把溶液沿玻璃棒引入容量瓶；用少量溶剂冲液烧杯后倒入容量瓶，最后再添加溶剂到刻度线。加溶剂时在接近刻度线前，应改用滴管吸取溶剂添加，以免超过刻度线。装透明溶液时应使液

2、体凹面下线与瓶上刻度线重叠；非透明溶液则应使液体凹面上线与刻度线重叠。混匀时，一手握瓶颈并按住瓶塞；一手托瓶底，反复颠倒、摇动数次。为了保证容量瓶的准确度，容量瓶中所装溶液温度应在20℃左右，不可过高或过低，切不可直接加热；用后只能以水冲洗或用铬酸洗液浸泡，切不可放入毛刷直接刷洗；洗净后倒置放干而不能烘干；容量瓶与其瓶塞是成套固定的，不可任意更换，以免不严而漏出液体；当配制蛋白质溶液时，先在烧杯内溶解后再沿瓶壁缓缓加入，在加到刻度后再混匀，以免产生大量气泡影响观察刻度。二：吸量管  是精密的卸量容器。实验室常用的分三种：1：刻度吸管 这类吸管的管壁上刻

3、印有多个刻度。刻度分为刻到尖端的及刻度不到尖端的；刻度读数有从上而下及从下而上的，用前必须分清楚。用刻度吸量管量取液体时，若使用刻度不到尖端的，只要小心将液体放至下端最后刻度处即可。若使用刻度到尖端的吸管则要注意使用规则。北京等地生产的吸管规定：1ml（包括1ml）以上的刻度管，在放出液体后，尖端遗留的液体不应吹出，只要使管尖紧靠容器内壁转动几秒钟即可；1ml以下（不包括1ml）的刻度管则必须把尖端遗留的液体吹入容器内。这类管上一般都印有“吹”字。若遇不明是否该吹的吸管，可作校正后（其校正法见附录）再行使用，以免产生错误。2：移液管  此类管中部有一圆

4、柱状空泡，只有一个刻度。由于卸出量已经固定，所以准确性比刻度吸管大。使用时，将所量取的液体慢慢放出，尖端所余少量液体不应吹出，只须在最后将管尖触及容器内壁转动几秒钟即可。这类管主要作量卸液体之用。3：奥氏（Ostwald）吸管 【精品文档】第5页精品文档，仅供学习与交流，如有侵权请联系网站删除这是一类特殊吸管。管下端有一卵形空泡，上端有一容量刻度。量取液体时，当所量取的液体自行流出后，必须将遗留在管尖内的少量液体吹入容器内。该管的特点是每单位容器所占管壁的面积最小，而且管内无凹凸处阻碍液体的流出，因此精确度较高。生物化学实验中常用它吸取血液、组织液和组

5、织匀浆等黏度较大的样品。三：吸量管的使用方法1：一般使用吸管是用拇指和中指握着管身，刻度数字对着自己，并使管与地面垂直；以食指堵塞吸管上端开口，用以控制液体的放出速度。2：吸取液体时，应用橡皮球（洗耳球）吸取，尽量不用嘴吸。特别是浓酸、浓碱及有毒物质，严禁用嘴吸。吸时，应把吸管插入液体的适当深度，以免发生空吸现象。吸取液体的量应超过最高刻度少许。3：当吸管从所吸取的液体中取出后，均须用滤纸片将管外壁抹干净（特别是吸取血液等粘性液体时更需要如此）以免影响取量。4：吸管用滤纸抹净后，将液体放至起始刻度，弃去多余液体，然后再放至所需刻度。读取刻度时，眼睛要与

6、所读取的刻度平行。刻度一般为圆圈或弧形，平行时只能看到一条线，液体应流至液体的凹面底部正好与该条线重叠。释放液体速度要慢，不可放开食指自由下落，以免液体在管壁内附着过多而造成误差。5：为减少误差。要选用恰当的吸管，如量取1.5ml时应选用2ml的刻度吸管，而不可选用5ml或10ml的，以1ml吸管吸取两次代替2ml也会产生误差。6：吸管用毕，应立即用水冲洗，特别吸血液、组织匀浆等含蛋白质溶液的吸管，因蛋白质干固后将堵塞吸管的尖端。水冲后，晾干，再泡入铬酸洗液中1h以上，最后取出洗净烘干。7：使用过程中要防止吸管尖端和上口碰破，尖端碰破残缺，则吸量不准；

7、上口破残，则不易控制流量。均不能使用。四：玻璃仪器的洗涤方法玻璃仪器的清洁与否，直接影响实验的结果，如因为仪器的不清洁或污染引起蛋白质变性或抑制酶的活性，造成错误的实验结果。因此玻璃仪器的洗涤清洁工作是非常重要的。在实验的过程中每个人都要逐步养成保持所用玻璃仪器清洁、放置整齐的良好习惯。其清洗方法如下：1：一般玻璃仪器 如试管、烧杯、量筒和锥形瓶等。先用自来水冲去污物，浸于洗衣粉或肥皂水内，用毛刷细心地刷洗内外（也可用毛刷抹肥皂或洗衣粉刷洗）务使多生泡沫，再用自来水冲洗，察看器壁上是否沾有水珠，沾有小水球表示未洗干净，应重复洗涤，直至不沾水珠为止。最后

8、用蒸馏水少量冲洗2～3次。洗净后器皿倒置干净处晾干或烘干（量筒不可烘烤）。【精品文档】第5页精