活菌计数参考材料.doc

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1、细菌计数参考材料一、检样稀释　　1、以无菌操作用1mL灭菌吸管吸取1∶10稀释液1mL，注入含有9mL灭菌生理盐水或其他稀释液的试管内，振摇试管混匀，做成1∶100的稀释液。　2、另取1mL灭菌吸管，按上条操作依次做10倍递增稀释液，每递增稀释一次，换用1支1mL灭菌吸管。　3、根据食品卫生标准要求或对检样污染情况的估计，选择三个稀释度，每个稀释度接种3管。二、基本原理　　平板菌落计数法是根据微生物在固体培养基上所形成的一个菌落是由一个单细胞繁殖而成的现象进行的，也就是说一个菌落即代表一个单细胞。计数时，先将待测样品作一系列稀释，再取一定量的稀释菌液接种到培养皿中，使其均匀分布于平皿中的培养

2、基内，经培养后，由单个细胞生长繁殖形成菌落，统计菌落数目，即可换算出样品中的含菌数。　　这种计数法的优点是能测出样品中的活菌数。三、器材　　大肠杆菌悬液，牛肉膏蛋白胨培养基，1ml无菌吸管，无菌平皿，盛有9ml无菌水的试管，试管架和记号笔等。四、操作步骤　　1、编号：取无菌平皿9套，分别用记号笔标明10-6、10-7各2套。另取7支盛有9ml无菌水的试管，排列于试管架上，依次标明10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10－7。2、稀释　　用1ml无菌吸管精确地吸取1ml大肠杆菌悬液放入10-1的试管中，注意吸管尖端不要碰到液面，另取1支吸管将管内悬液来回吸吹三次，吸时伸

3、入管底，吹时离开水面，使其混合均匀。换一支吸管自10-1试管吸1ml放入10-2试管中，吸吹三次，……其余依次类推。整个稀释过程如图Ⅷ-3。　　3、取样　　用3支1ml无菌吸管分别精确地吸取10-6、10-7的稀释菌液0．1ml，对号放入编好号的培养皿中。　　4、计数　　培养24小时后，取出培养皿，算出同一稀释度三个平皿上的菌落平均数，并按下列公式进行计算：　　每毫升中总活菌数=同一稀释度三次重复的菌落平均数×稀释倍数×10　　一般选择每个平板上长有30—300个菌落的稀释度计算每毫升的菌数最为合适。同一稀释度的三个重复的菌数不能相差很悬殊。由10-6、10-7两个稀释度计算出的每毫升菌液中

4、总活菌数也不能相差悬殊，如相差较大，表示试验不精确。　　平板菌落计数法，所选择倒平板的稀释度是很重要的，一般以三个稀释度中的第二稀释度倒平板所出现的平均菌落数在50个左右为最好。　　平板菌落计数法的操作是先将牛肉膏蛋白胨琼脂培养基溶化后倒平板，待凝固后编号，并于37℃温室中烘烤30分钟左右，使其干燥，然后用无菌吸管吸取0.1ml菌液对号接种于不同稀释度编号的培养皿中的培养基上，再用无菌玻璃刮棒将菌液在平板上涂布均匀，平放于实验台上20—30分钟，使菌液渗透入培养基内，然后再倒置于37℃的温室中培养。五、无菌操作的基本要求1、试验开始前，应以湿式方法清洁台面和打扫室内地面，然后以紫外线或其他方

5、法对实验室内空气进行消毒；2、实验人员应穿戴工作服、口罩、帽子；进行无菌检验时，需经风淋后进入实验室，然后，正确穿戴好无菌隔离衣、帽和口罩；3、每吸取一次不同样液应更换无菌吸管，接种环（针）需在火焰上烧灼灭菌后，才可再次使用；4、要求无菌的试剂，如蒸馏水、生理盐水、磷酸盐缓冲液、培养基、牛血清白蛋白、标准硬水、中和剂等，均需灭菌或过滤除菌；5、无菌器材和试剂，使用前须检查容器或包装是否完整，有破损者不得使用；6、正在使用的无菌器材和试剂不得长时间暴露于空气中；7、移液或接种时，应将试管口和琼脂平板靠近火焰，防止污染；8、所有用过的污染器材，应立即放入盛有消毒液的容器中，以防止对周围环境和清洁

6、物品造成污染；9、若不慎发生微生物培养物摔碎或其他试验微生物泄漏事故时，不论是否具有致病性，均应立即对污染及可能波及的区域进行消毒处理；10、全部试验结束后，应按常规对室内空气和环境表面进行消毒处理。六、活菌培养计数技术1、适用范围测定细菌悬液、菌片、采样液等样本中含有活菌的数量。2、试验器材（1）刻度吸管（1.0ml、10.0ml）。（2）稀释液：（3）营养琼脂培养基：3、操作程序本规范要求在杀菌试验中的活菌培养计数统一使用倾注法。其操作程序如下。（1）对菌悬液可直接进行培养计数。对菌片、采样棉拭与小型固体样本等，应将其上的细菌洗下成为菌悬液后进行培养计数。洗菌时，一般以稀释液为洗液。具体

7、方法如下:取含5.0ml稀释液无菌试管，对菌片或小型固体样本直接投入即可，对棉拭则将其采样端剪入管内，每管一份样本。而后，用电动混合器混合20s（或在手掌上用力振敲80次），将菌洗下形成菌悬液。以上操作应严格按无菌要求进行。（2）将试管按需要数量分组排列于试管架上，每管加入4.5ml稀释液。各组由左向右，逐管标上10-1、10-2、10-3......等。（3）将菌悬液样本在用电动混合器混合20s（或在手掌上