家兔实验性肺水肿-陀螺.ppt

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1、家兔实验性肺水肿病理生理学研究疾病发生、发展过程中功能和代谢改变的规律及其机制的学科。揭示疾病的本质为疾病的治疗和预防提供理论和实验依据？家兔实验性肺水肿掌握复制家兔实验性肺水肿。观察肺水肿的表现。分析实验性肺水肿的原理及机制。【实验目的】肺水肿：由于液体从毛细血管渗透至肺间质或肺泡所造成的。快速大量输生理盐水NS注射肾上腺素实验性肺水肿【实验原理】体内外液体交换失衡（水、钠摄入排出）肺水肿机制血管内外液体交换失衡1）毛细血管流体静压↑2）血浆胶体渗透压↓3）微血管壁通透性↑4）淋巴回流受阻大剂量快速输液（NaCl）一定量Ad

2、r的作用实验性肺水肿【实验原理】2）毛细血管流体静压↑3）血浆胶体渗透压↓4）微血管壁通透性↑血管内外液体交换失衡体内外液体交换失衡1）循环血量↑实验原理本实验通过大量滴注生理盐水，并静脉注射肾上腺素，导致急性心源性肺泡性肺水肿。大量滴注生理盐水，增加血容量，从而使回心血量增加。肾上腺素，引起外周血管广泛收缩，血液由体循环急速转移到肺循环，结果是左心房压力和肺毛细血管有效滤过压增高，液体流入肺间质空隙增多而出现肺水肿。大剂量快速输液（NaCl）实验性肺水肿【实验原理】注射Adrα-R，收缩外周血管，↑回心血量β-R，心动加速，

3、↑左心负荷↑肺Cap通透性↑血容量→↓血浆胶体渗透压→↑Cap流体静压肺水肿肺水肿肺淤血实验对象家兔，雌雄不限，体重2-3千克实验相关用品生理盐水、乌拉坦、气管插管和与之配套的呼吸描记装置（二道生理记录仪）或生物信号采集系统。静脉导管和静脉输液装置，颈部小手术器械，婴儿秤，天平，听诊器，兔固定台，1ml、2ml注射器各2具，丝线，纱布，滤纸，烧杯等。步骤和方法1.家兔称重、麻醉和固定：取家兔一只， 称重：2.2Kg；20%氨基甲酸乙酯，5ml /Kg体重，耳缘静脉缓慢注射，共注射11ml,至呼吸深而慢、反射迟钝（角膜反射、夹肢

4、反射）为止。背位固定。称重，确定Adr给药量：0.45ml/kg步骤和方法家兔的固定腕关节以上踝关节以上2.颈部手术：2.1气管插管术剪去颈部兔毛，沿颈正中线切开皮肤5-6cm，用止血钳纵向钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露并分离气管，在气管3-5节环状软骨之间做“⊥”切口，插入气管插管并结扎固定。3.右颈外静脉插管术—肺水肿造模排掉输液管中的空气。右颈静脉远心端结扎，静脉前壁倒“V”切口，输液管插入，固定。缓慢输液，保持通畅。复制肺水肿模型3.1输入37℃生理盐水，输入量100ml/kg，输入速度180-200滴/min。3.2

5、滴注接近完毕时，立即向输液瓶中加入肾上腺素生理盐水（0.45mg/kg）继续输液。肾上腺素加入量4.5ml/kg，0.01%肾上腺素生理盐水3.3当家兔呼吸频率明显变化，用听诊器听到肺部出现湿性罗音。3.4急性肺水肿发生时（有粉红色泡沫样液体溢出时），立即夹住气管停止输液，快速处死家兔。3.5打开家兔胸腔，支气管分叉处用线结扎，防止水肿液溢出。在结扎处上方切断气管，将肺清理出（把心脏等清除），置于滤纸上，切勿挤压，准确称肺重量，并计算肺系数。【肺系数=肺重量（g）/体重（kg）】正常肺系数：4～5，肺系数超过此值，提示肺内有渗

6、出物聚集，肺水肿形成。4.观察指标4.1死亡动物记录死亡时间；4.2观察家兔的呼吸频率变化；4.3观察家兔肺部呼吸音的变化；4.4气管插管口粉红色泡沫样液体溢出；4.5观察肺大体及颜色改变：切开肺脏，注意肺切面有无血性泡沫液体流出；4.6肺重量（g）/体重（kg）计算肺系数。皮肤正中作纵行切口注意：钝性分离用手指在皮肤外面向上顶起，即可见到呈暗紫色的粗大血管的颈外静脉气管近心端远心端右侧头尾左侧气管近心端远心端右侧头尾左侧线气管近心端远心端右侧头尾左侧线血管长度、插管、结扎气管近心端远心端右侧头尾左侧线气管近心端远心端右侧头尾

7、左侧线插管前，剪口位置，形状清理分泌物麻醉、固定分离左侧颈外静脉，穿线备用左侧颈外静脉插管，NaCl快滴（100ml）（不能成线）分离气管，倒T型切口，插管固定观察现象处死动物，取肺观察形状，大小流程图抓取家兔，称重NaCl输液结束后，给予Adr（0.45ml/kg）注意事项1.禁用实验前已有肺部异常征象的夹拖，以免影响实验观察，2.麻醉期间注意观察，将促其张力，呼吸频率和角膜反射的变化，防止麻醉，过深或过浅3.气管插管之前，最好检查一下气管内有无出血或分泌物，如有应相将出血或分泌物清理，或冲洗干净再插管，否则容易在气管内阻塞

8、，而影响实验指标的观察。4.动物对注入肾上腺素的耐受性个体差异比较大，有些动物需注入角度量的肾上腺素，才出现急性肺水肿。5.解剖取费帐时注意勿损伤肺表面和挤压肺组织，以防水肿液流出，影响肺系数值实验报告实验题目一、实验目的二、实验对象三、实验步骤四、实验结果五、思考题1.肾上