实验十三土壤和植物中铁的测定

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1、实验十三土壤和植物中铁的测定(邻菲罗啉比色法)植物中铁的测定一、方法原理先用盐酸羟胺(或对苯二酚、亚硫酸钠等)将溶液中的Fe3+还原为Fe2+，然后在pH2~9范围内与邻菲罗啉作用生成红色络合物，在0.1~6ppm范围内，含铁量与色深成正比，可比色测定。反应式：4Fe3++2NH20H→4Fe2++N20+H20+4H+Fe2++3C12H8N2→Fe[C12H3N2]32+测定波长为508nm，该法灵敏度高，稳定性好。二、实验试剂1．10％盐酸羟胺：10g盐酸羟胺(NH20H·HCl)溶于100ml水中，此

2、溶液可稳定几天。2．0.2％2，4—二硝基酚：0.2g2，4—二硝基酚溶于100ml水。3．1mol/LNaOH:40gNaOH溶于1000ml水中。4．0.1mol/LHCl：8.3ml．浓HCl稀释为1000ml。5．1％邻菲罗啉：1g邻菲罗啉(C12H8N2·H20)溶于100ml水中；可温热助溶，贮于暗处，如变色，要重配(也可取1g溶于100ml95％乙醇中)。6.铁标准溶液：取纯铁粉0.1000g(或优级纯硫酸亚铁铵[Fe(NH4)2(SO4)2·6H20]0.7022g)，溶于20ml1mol/L

3、HCl，移入1000ml容量瓶，水定容，此为含Fe100ppm的铁标准溶液。取10ml此液，稀释定容为100ml，此为10ppmFe标准溶液。三、实验仪器分光光度计、振荡机。四、操作步骤4.1样品前处理：植物组织样品的采集、制备和保存植物组织样品的采集首先是选定有代表性的株样。如同土壤样品的采集方法，在田间按照一定的路线多点采取组成平均样品。株样数目应视植物的种类、株间变异程度、种植密度、株样大小或生育期以及所要求的准确度而定，一般为10-50株。从大田或实验区采样要注意群体的密度、长势、生育期的一致。如果为

4、了某一特定的目的，例如缺素诊断采样时，则应注意株样的典型性，并且要同时在附近地块选取有对比意义的正常典型株样，使分析结果能通过比较说明问题。用于营养诊断测定样品还要特别注意植株的采集部位的组织器官及采样的时间。采样的植株如需要分不同的器官测定，需要立即将其剪开，以免养分运转。剪碎的样品太多时，可在混匀后用四分法缩分至所需要量。用于营养诊断分析的样品还应尽可能立即称量鲜重。采集的植株样品是否需要洗涤应视样品的清洁程度和分析要求而定。一般微量元素的分析和肉眼明显看得见或明知受到施肥污染的样品需要洗涤。植物样品应在

5、刚采集的新鲜状态冲洗，否则一些易溶性养分很容易从已经死亡的组织中洗出。一般可以用湿棉布（必要时可沾一些很稀的如1mg/L的有机洗涤剂）擦净表面的污染物，然后用蒸馏水或去离子水淋洗1-2次即可。一般测定不容易起变化的组分用干燥样品较方便。新鲜样品应该立即干燥，减少体内呼吸作用和霉菌活动引起的生化变化。植株样品的干燥通常分两部分：先将鲜样在80-90℃烘箱中鼓风烘15-30min（松软组织15min，致密组织烘30min），然后降温到60-70℃，逐尽水分。干样品可用研钵或带柄刀片或齿状（用于种子样品）的磨碎机粉

6、碎，并过筛。分析样品的细度应视称量的多少而定，通常可用圆孔直径为0.5-1mm筛，称量少于1g的样品最好过0.25mm甚至0.1mm筛。过筛后应充分混匀，保存于磨口的广口瓶中，内外各贴一样的标签。样品瓶应置于洁净、干燥处。若样品可能需要保存很常时间，应进行灭菌（如γ射线），然后置于聚乙烯或袋中封口保存。样品在粉碎和储藏过程中，又会吸收空气中的水分。所以，在精密分析称样前，还必须将粉碎的样品在65℃（12-24h）或90℃（2h）再次烘干，一般常规分析则不必。称样时应充分混匀后多点采样，这在称样量少而样品相对较

7、粗时更应特别注意。用于微量元素分析的样本采集与制备应特别注意要防止可能引起的污染。例如在干燥箱中烘干时，应该防止金属粉末的污染。用于样品采集和粉碎样品的研钵设备应该采用不锈钢器具和塑料网筛。如要准确分析铁，最好在玛瑙研钵上研磨。4.2植物样品处理：方法一干灰化法：称取过0.5mm筛孔的烘干植物样品0.5-1.0000g，置于石英坩埚中，在电炉上加热炭化，再移入高温电炉500°2-3h，灰化后冷却。准确加入1:1硝酸溶液5ml，溶解灰分，溶解后无损转移入50ml容量瓶中，用水定容。用干滤纸过滤，滤液收集在干塑料

8、瓶内。方法二盐酸浸提法：用蒸馏水将正常叶片洗干净，在105°下“杀青”，然后放在室内晾干，用瓷研钵或不锈钢粉磨机磨碎过0.5mm筛。分析前放在70°干燥箱内烘干4-6h，称取样品0.5-1.0000g加入盐酸溶液（浓度为1:50）的量按照1:50的含量.方法三湿消化法：用蒸馏水将正常叶片洗干净，在105°下“杀青”，然后放在室内晾干，用瓷研钵或不锈钢粉磨机磨碎过0.5mm筛。分析前放在70°干燥箱内