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1、Sanger测序一、原理Sanger法测序是利用一种DNA聚合酶来延伸结合在待定序列模板上的引物，直到掺入一种链终止核苷酸为止。每一次序列测定由一套四个单独的反应构成，每个反应含有所有四种脱氧核苷酸三磷酸(dNTP)，并混入限量的一种不同的双脱氧核苷三磷酸(ddNTP)。由于ddNTP缺乏延伸所需要的3-OH基团，使延长的寡聚核苷酸选择性地在G、A、T或C处终止并且在每个碱基后面进行荧光标记，产生以A、T、C、G结束的四组不同长度的一系列核苷酸，然后在尿素变性的PAGE胶上电泳进行检测，从而获得可见的DNA碱基序列。 ABI3730XL测序仪是高
2、质量的长片段读取和序列分析的测序平台，应用灵活而广泛，可同时分析96个样品。该仪器采用4色荧光同时检测，可不间断24小时运行，自动灌胶，上样，电泳分离，检测及数据分析。二、技术路线三、操作流程1、DNA的提取一般采用试剂盒提取（参考试剂盒提供的protocol）。2、PCR扩增与电泳①配置PCR体系（25ul体系）DNA浓度大于30ng/ul（DNA浓度需要测定）:试剂名称用量H2O15.2μl10*PCRbuffer2.5μl2.5MmdNTPs3μlprimer（前后引物各1ul）2μlLATaq酶0.3μlDNA模板2μl注意:对于CEBPA和
3、NOTCH1此类GC含量高的将10*PCRbuffer2.5ul换为2*GCbuffer12.5ul,H2O为5.2ul。每次96孔板加样后都必须贴封口膜，离心混匀（2000g1min）,防止挂壁。EP管与96孔板等都为商品型一次性产品,注意标记板号,样本号和引物号。②设置PCR反应程序一般程序：96℃预变性2min,96℃30s,57℃30s,72℃2min,35cycles;72℃延伸5min;4℃/15℃∞。CEBPA和NOTCH1程序：96℃预变性5min,95℃40s,64℃/66℃40s,72℃1min,35cycles;72℃延伸5mi
4、n;4℃/15℃∞。③琼脂糖凝胶电泳配置1.5%（60ml0.9g,大胶板150ml2.25g）的琼脂糖凝胶,再分别取2ulloadingbuffer与4ulDNA扩增产物混合后进行电泳,160V35min。3、PCR产物纯化①配制消化液TaKaRaAlkalinePhosphatase虾碱酶0.5μlTaKaRaExonucleaseI外切酶0.5μl配置消化液,分别取虾碱酶与外切酶1:1混合。PCR产物离心后，每个孔中加入1μl以上消化液到PCR反应液中。②纯化反应：上PCR仪进行程序反应。程序为SAP:37℃60min,80℃15min,4℃/
5、15℃∞。4、测序反应①SEQMIX配置试剂：ABIPRISM®BigDye®Terminatorv3.1cycleSequencingKit根据PCR反应的数量按照下表配制MIX：试剂名称用量BigDye0.4μlSequencingBuffer0.8μlH2O1.8μlPrimer（3.2pmol/μl）（引物可单加）1μl模板（即3-②中的产物）1ul按照测序反应表在96孔板中加入3μl以上MIX，1μl对应引物，1μl对应PCR产物（注意封膜后要求压膜）,离心。（测序反应只有一个引物，为避免加样过程中的液体消耗，体系需要超量配置）。②SEQ程
6、序:96℃预变性2min,96℃10s,55℃5s,60℃90s,25cycles;4℃/15℃∞。5、纯化此步骤是将测序反应体系中除目标单链核酸片段之外的杂质尽可能去除,以减少ABI3730毛细管电泳时杂质对峰图质量的影响。①试剂准备：0.125mol/LEDTA-Na2溶液：称取2.325gEDTA-Na2·2H2O于50ml离心管中，加入40ml去离子水，65℃水浴加热，间歇振荡几次至完全溶解，用去离子水定容至50ml，振荡10秒混匀。无水乙醇（优级纯）去离子甲酰胺HIDI②将无水乙醇与蒸馏水混合配制成85%乙醇，70%乙醇，当天使用。③测序反
7、应板离心后，每个反应孔加入EDTA-Na2溶液2.5μl，85%乙醇40μl，充分震荡3min，离心3000g，4℃，30min（EDTA作为金属离子螯合剂,能与测序PCR反应体系中的离子结合从而去除离子）。④离心结束后将测序反应板倒置于吸水纸上，倒离心至离心力达到185g（或900rpm）时立即停止。⑤每孔加入70%乙醇50μl，充分震荡1min，离心3000g，4℃，15min（DNA片段在70%的乙醇中溶解度低,能通过离心沉淀下来）。⑥重复4步骤。⑦避光风干15~30min，每孔加入10μlHIDI（变性处理，生物安全柜中进行），离心后在PCR
8、仪中96℃反应2min，降温至4℃后取出。6、上机测序变性结束后，上测序仪（ABI3730）进行测序。1.创
