大花蕙兰繁殖技术手册

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1、大花蕙兰繁殖技术——组织培养繁殖　　一、组培操作　　在春季2～4月大花蕙兰新芽萌发期，选长8厘米左右的新芽从基部与老假鳞茎相连接处切断。尽量采用露在外面，不被栽培材料埋起的芽。采芽前数日减少叶面喷水，可减少菌类污染。采下的芽先用肥皂和流动自来水冲洗10～15分钟，然后在无菌条件下切去芽的上半段，并剥除最外面的1～2枚叶片，在95％的酒精中蘸一下(1～2秒)，立即浸泡在10％的次氯酸钠水溶液中。10分钟，稍加摇动。取出后立即用无菌水冲洗，再剥去2～3片叶，放入5％次氯酸钠水溶液中，5分钟后用无菌水冲洗，剥至留下最后一枚叶片。以生长点为中心，切取0.3～0.4立

2、方厘米的组织块，浸泡在1％次氯酸钠1分钟后取出，用无菌水冲洗数次，用解剖刀切成数块，分别放入已准备好的培养基上。每瓶最好只接种一块外植体，以免相互感染。　　切取生长点的大小依培养目的不同而异。在大花蕙兰茎尖培养中，再分裂增殖的部位不仅在生长点部分，生长点与叶原基的中间也有较强的分生能力。切取茎尖时带有两个左右的叶原基，即较大的组织块效果较好。　　二、培养和增殖　　接种好的培养瓶放在室温20～25℃大花蕙兰繁殖技术——组织培养繁殖　　一、组培操作　　在春季2～4月大花蕙兰新芽萌发期，选长8厘米左右的新芽从基部与老假鳞茎相连接处切断。尽量采用露在外面，不被栽培材

3、料埋起的芽。采芽前数日减少叶面喷水，可减少菌类污染。采下的芽先用肥皂和流动自来水冲洗10～15分钟，然后在无菌条件下切去芽的上半段，并剥除最外面的1～2枚叶片，在95％的酒精中蘸一下(1～2秒)，立即浸泡在10％的次氯酸钠水溶液中。10分钟，稍加摇动。取出后立即用无菌水冲洗，再剥去2～3片叶，放入5％次氯酸钠水溶液中，5分钟后用无菌水冲洗，剥至留下最后一枚叶片。以生长点为中心，切取0.3～0.4立方厘米的组织块，浸泡在1％次氯酸钠1分钟后取出，用无菌水冲洗数次，用解剖刀切成数块，分别放入已准备好的培养基上。每瓶最好只接种一块外植体，以免相互感染。　　切取生长

4、点的大小依培养目的不同而异。在大花蕙兰茎尖培养中，再分裂增殖的部位不仅在生长点部分，生长点与叶原基的中间也有较强的分生能力。切取茎尖时带有两个左右的叶原基，即较大的组织块效果较好。　　二、培养和增殖　　接种好的培养瓶放在室温20～25℃大花蕙兰繁殖技术——组织培养繁殖　　一、组培操作　　在春季2～4月大花蕙兰新芽萌发期，选长8厘米左右的新芽从基部与老假鳞茎相连接处切断。尽量采用露在外面，不被栽培材料埋起的芽。采芽前数日减少叶面喷水，可减少菌类污染。采下的芽先用肥皂和流动自来水冲洗10～15分钟，然后在无菌条件下切去芽的上半段，并剥除最外面的1～2枚叶片，在9

5、5％的酒精中蘸一下(1～2秒)，立即浸泡在10％的次氯酸钠水溶液中。10分钟，稍加摇动。取出后立即用无菌水冲洗，再剥去2～3片叶，放入5％次氯酸钠水溶液中，5分钟后用无菌水冲洗，剥至留下最后一枚叶片。以生长点为中心，切取0.3～0.4立方厘米的组织块，浸泡在1％次氯酸钠1分钟后取出，用无菌水冲洗数次，用解剖刀切成数块，分别放入已准备好的培养基上。每瓶最好只接种一块外植体，以免相互感染。　　切取生长点的大小依培养目的不同而异。在大花蕙兰茎尖培养中，再分裂增殖的部位不仅在生长点部分，生长点与叶原基的中间也有较强的分生能力。切取茎尖时带有两个左右的叶原基，即较大的

6、组织块效果较好。　　二、培养和增殖　　接种好的培养瓶放在室温20～25℃大花蕙兰繁殖技术——组织培养繁殖　　一、组培操作　　在春季2～4月大花蕙兰新芽萌发期，选长8厘米左右的新芽从基部与老假鳞茎相连接处切断。尽量采用露在外面，不被栽培材料埋起的芽。采芽前数日减少叶面喷水，可减少菌类污染。采下的芽先用肥皂和流动自来水冲洗10～15分钟，然后在无菌条件下切去芽的上半段，并剥除最外面的1～2枚叶片，在95％的酒精中蘸一下(1～2秒)，立即浸泡在10％的次氯酸钠水溶液中。10分钟，稍加摇动。取出后立即用无菌水冲洗，再剥去2～3片叶，放入5％次氯酸钠水溶液中，5分钟后

7、用无菌水冲洗，剥至留下最后一枚叶片。以生长点为中心，切取0.3～0.4立方厘米的组织块，浸泡在1％次氯酸钠1分钟后取出，用无菌水冲洗数次，用解剖刀切成数块，分别放入已准备好的培养基上。每瓶最好只接种一块外植体，以免相互感染。　　切取生长点的大小依培养目的不同而异。在大花蕙兰茎尖培养中，再分裂增殖的部位不仅在生长点部分，生长点与叶原基的中间也有较强的分生能力。切取茎尖时带有两个左右的叶原基，即较大的组织块效果较好。　　二、培养和增殖　　接种好的培养瓶放在室温20～25℃，有明亮的散射光或日光灯下15～20厘米，光照强度在2000勒克斯左右，不可阳光直射，每天光

8、照时间12小时左右。4～6周后可在外植体周围形成许多