淡水生物调查技术规范

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1、一　浮游生物调查1　采样1.1　采样点布设1.1.1　原则根据水体面积、形态、浮游植物的生态分布特点和调查的目的等决定采样点数量。采样点应有代表性，能反映整个水体浮游生物的基本情况。采样点设置数量见表1。表1　采样点设置数量5～20水体面积（km2）＜22～520～5050～100100～500＞5005～7采样点数（个）33～57～1010～1515～2020～301.1.2　湖泊、水库湖泊应兼顾在近岸和中部设点，可根据湖泊形状在湖心区、大的湖湾中心区、进水口和出水口附近、沿岸浅水区（有水草区和无水草区）分散选设；水库应在库心区（

2、河道型水库应分别在上游、中游、下游的中心区）及大的库湾中心区、主要进水口、出水口附近、主要排污口、入库江河汇合处设点。1.1.3　江河在干流上游、中游、下游，主要支流汇合口上游、汇合后与干流充分混合处，主要排污口附近、河口区等河段设置采样断面。根据江河宽设置断面采样点，一般小于50m的只在中心区设点；50m～100m的可在两岸有明显水流处设点；超过100m的应在左、中、右分别设置采样点。1.2　采样层次1.2.1　浮游植物采样水深小于3m时，只在中层采样；水深3m～6m时，在表层、底层采样，其中表层水在离水面0.5m处，底层水在离泥

3、面0.5m处；水深6m～10m时，在表层、中层、底层采样；水深大于10m时，在表层、5m、10m水深层采样，10m以下处除特殊需要外一般不采样。1.2.2　浮游动物采样由水体的深度决定，每隔0.5m、1m或2m取一个水样加以混合，然后取一部分作为浮游动物定量之用。1.3　采样频次和采样时间采集次数依研究目的而定，采样次数可逐月或按季节进行，一般按季节进行。样品瓶必须贴上标签，标明采集时间、地点。采样时间尽量保持一致，一般在上午8：00～10：00进行。1.4　采样方法1.4.1　浮游植物采样定量样品在定性采样之前用采水器采集，每个采

4、样点取水样1L，贫营养型水体应酌情增加采水量。泥沙多时需先在容器内沉淀后再取样。分层采样时，取各层水样等量混匀后取水样1L。大型浮游植物定性样品用25号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集，注意网口与水面垂直，网口上端不要露出水面。1.4.2　浮游动物采样原生动物、轮虫和无节幼体定量可用浮游植物定量样品，如单独采集取水样量以1L为宜；定性样品采集方法同浮游植物。枝角类和桡足类定量样品应在定性采样之前用采水器采集，每个采样点采水样10L～50L，再用25号浮游生物网过滤浓缩，过滤物放入标本瓶中，并用滤出水洗过滤网3次，所得过滤物也放入上述瓶中

5、；定性样品用13号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集。注意过滤网和定性样品采集网要分开使用。2　样品的固定浮游植物样品立即用鲁哥氏液固定，用量为水样体积的1％～1.5％。如样品需较长时间保存，则需加入37%～40％甲醛溶液，用量为水样体积的4％。原生动物和轮虫定性样品，除留一瓶供活体观察不固定外，固定方法同浮游植物。枝角类和桡足类定量、定性样品应立即用37%～40％甲醛溶液固定，用量为水样体积的5％。3　水样的沉淀和浓缩固定后的浮游植物水样摇匀倒入固定在架子上的1L沉淀器中，2h后将沉淀器轻轻旋转，使沉淀器壁上尽量少附着浮游植物，再静置2

6、4h。充分沉淀后，用虹吸管慢慢吸去上清液。虹吸时管口要始终低于水面，流速、流量不能太大，沉淀和虹吸过程不可摇动，如搅动了底部应重新沉淀。吸至澄清液的1/3时，应逐渐减缓流速，至留下含沉淀物的水样20mL～25（或30～40）mL，放入30（或50）mL的定量样品瓶中。用吸出的少量上清液冲洗沉淀器2次～3次，一并放入样品瓶中，定容到30（或50）mL。如样品的水量超过30（或50）mL，可静置24h后，或到计数前再吸去超过定容刻度的余水量。浓缩后的水量多少要视浮游植物浓度大小而定，正常情况下可用透明度作参考,依透明度确定水样浓缩体积见

7、表2，浓缩标准以每个视野里有十几个藻类为宜。表2　依透明度确定水样浓缩体积透明度（cm）1L水样浓缩后的水量（mL）＞10030～5050～100100～5030～50500～10020～301000（不浓缩）＜20＞1000（稀释）原生动物和轮虫的计数可与浮游植物计数合用一个样品；枝角类和桡足类通常用过滤法浓缩水样。4　种类鉴定优势种类应鉴定到种，其它种类至少鉴定到属。种类鉴定除用定性样品进行观察外，微型浮游植物需吸取定量样品进行观察，但要在定量观察后进行。5　计数5.1　浮游植物计数5.1.1　计数框行格法计数前需先核准浓缩沉淀

8、后定量瓶中水样的实际体积，可加纯水使其成30mL、50mL、100mL等整量。然后将定量样品充分摇匀，迅速吸出0.1mL置于0.1mL计数框内（面积20mm×20mm）。盖上盖玻片后，在高倍镜下选择3行～5行逐行计数，数量少时可全片计