心血管活动的生理性调节

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1、实验9心血管活动的生理性调节【原理】心血管活动受神经、体液和自身机制的调节。神经调节主要是降压反射，心血管中枢通过反射而调节心血管活动，改变心输出量和外周阻力进而调节动脉血压。支配心脏的交感神经兴奋时，末梢释放去甲肾上腺素，激活心肌细胞膜上的β1受体，使心率加快，心肌收缩力加强，心内兴奋传导加速，从而使心输出量增加。支配心脏的迷走神经兴奋时末梢释放乙酰胆碱，激活心肌细胞膜上的M受体，引起心率减慢，心房肌收缩力减弱，房室间传导速度减慢，从而使心输出量减少。支配血管的自主神经主要是交感缩血管神经，它兴奋时末稍释放的去甲肾上腺素主要与

2、血管平滑肌细胞膜上的α受体结合，使平滑肌收缩，血管口径变小，外同阻力增大。体液调节因素最重要的是肾上腺素、去甲肾上腺素、乙酰胆碱。肾上腺素对α和β受体都有激动作用，可使心跳加快加强，心输出量增加；它对血管的影响要看所作用的血管壁上哪一类受体占优势。一般来说，在整体情况下，小剂量肾上腺素主要引起体内血液重新分配，对总外周阻力影响不大，但大剂量肾上腺素亦可使外周阻力明显升高。去甲肾上腺素主要激活α受体，引起外周血管广泛收缩，通过增加外周阻力而使动脉血压升高；对心脏的直接作用较小，而且在外源给予时常因明显的升压作用而引起反射性心率减慢

3、。此外，循环血量与血管系统容量相适应也是动脉血压形成的基本因素。较大量失血后，体循环平均充盈压降低，动脉血压降低。【目的】学习动脉血压的直接检测方法和血流动力学实验方法;观察整体情况下一些神经体液因素对心血管活动的调节;【实验步骤及观察项目】1.手术(1)麻醉动物称重后，用1％戊巴比妥钠2.5～3.0ml/kg或20％氨基甲酸乙酯5ml/kg由兔耳缘静脉缓慢注入，注射过程中注意观察动物肌张力、呼吸频率及角膜反射的变化，防止麻醉过深。(2)动物固定将麻醉好的动物仰卧位固定于兔手术台上。(3)插气管插管及分离颈部血管和神经用水抹湿颈

4、部毛发并将毛发剪至装有水的磁碗内，沿中线剪开皮肤5～7cm，钝性分离皮下组织和浅层肌肉。暴露气管，在气管下穿一条粗线，用剪刀在气管壁上作一倒T型切口，插入气管插管，结扎固定。将切口边缘的皮肤及皮下肌肉组织向外侧拉开，在深部可见位于气管旁的血管神经束，仔细辨认并小心分离右侧的迷走神经和降压神经（图7-1），下穿不同颜色的湿丝线备用。然后分离双侧的颈总动脉，穿线备用。2.连接将压力换能器插头连接至BL系统第1通道或MS系统第３通道的插座，换能器接二个三通开关及动脉插管，压力腔内充满肝素液并排除全部气泡！排气后二个三通的开关处在关的位

5、置。3.软件操作开机并启动相关实验系统。BL系统①选实验项目中循环实验的左心室内压与动物血压。②刺激参数设置粗电压，连续单刺激，延时0ms，波宽1ms，频率30Hz，强度1为3.0V。③G、T、F可用默认值（100，DC，30Hz），必要时可调节G的放大倍数。④扫描速度约200ms/div，必要时可根据波型进行调节。4.插动脉插管尽可能长地分离左侧颈总动脉，在动脉中央用线双结扎（需预先静脉注射肝素液１ml/kg），并在两结扎处的中间剪断动脉。用动脉夹夹闭近心端尽可能靠近心脏的动脉，在结扎处稍下剪一斜切口，向心脏方向插入已注满肝素

6、盐水的动脉插管（注意管内不应有气泡）。左手拇、食指指腹稍捏紧血管壁及动脉插管，缓慢松开动脉夹，打开靠近动脉端的三通开关并观察血压曲线。顺心脏方向插入插管（深约4cm）并用线将动脉及插管扎一活结，在活结上夹一动脉夹。注意：①保持插管与动脉方向一致；②换能器应与兔心脏同一水平。5.实验项目(1)夹闭颈总动脉观察动脉血压，如血压波形有明显降中狭波导致心率翻倍时，MS系统选“平滑滤波”约8点(心率稳定显示为每分钟200～280次即可)。待血压平稳后开始记录。轻轻提起并用动脉夹夹闭右侧颈总动脉，注意观察血压变化；约15秒后放开动脉夹。(2

7、)刺激降压神经中枢端结扎降压神经，并于结扎点的心脏端剪断该神经。启动刺激器刺激降压神经的中枢端，血压变化明显时，关闭刺激器。(3)刺激迷走神经外周端结扎迷走神经，并于结扎点的头端剪断该神经。启动刺激器刺激迷走神经外周端（连心脏端），血压变化明显时，关闭刺激器。(4)血量减少对血压的影响轻牵左颈总动脉远心端的结扎线，用动脉夹夹闭该端尽可能靠近下颌的动脉，在结扎处稍上方剪一斜切口，向头端方向插入已注满肝素盐水并连有三通的动脉插管，用线结扎。打开三通开关，放血至含有少许肝素液的有刻度烧杯并观察血压变化。放血量为总血量的20％（兔总血量

8、约为70ml/kg）。(5)补充血量对血压恢复的作用放血5min后，将血液经放血的三通回输。约3min输完，观察血压变化。(6)血流动力学实验松开左颈总动脉近心端的活结（左手稍捏紧动脉），将动脉插管插向心室腔（近动脉瓣处可感觉到动脉的明显搏动，可反复往前或退后试