实验1 蛙坐骨神经––––腓肠肌标本制备

实验1 蛙坐骨神经––––腓肠肌标本制备

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时间:2019-05-22

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1、实验1蛙坐骨神经––––腓肠肌标本制备、分析探讨刺激频率对肌肉收缩的影响【课程名称】【实验名称】【实验性质】【器材】蟾蜍或蛙;任氏液;二道生理记录仪、双脉冲刺激器、肌槽、常规手术器械、玻璃分针、毁髓针、锌铜弓、解剖盘、烧杯、滴灌、任氏液等。【实验目的】1.学习坐骨神经–腓肠肌标本的制备方法。2.分析探讨刺激频率对肌肉收缩的影响。【实验原理】刺激坐骨神经能引起腓肠肌产生收缩。在其他条件不变情况下,不断增大刺激频率可引起肌肉收缩形式发生改变。若刺激频率较小,两次刺激间隔时间大于一次肌肉收缩和舒张所持续的时间(即单收缩)时,肌肉收缩表现为一连串的单收缩;若增大刺激频率,使两次刺激间隔时间大于一

2、次肌肉收缩的收缩期时间,而小于单收缩时,肌肉呈现不完全强直收缩;若继续增加刺激频率,使两次刺激间隔时间小于一次肌肉收缩的收缩期时间,肌肉则表现出完全强直收缩。【实验步骤】1、双毁髓:左手握蟾蜍,背部向上。用食指按压其头部前端,拇指压住躯干的背部,使头向前俯;右手持毁髓针,由两眼之间中线向后方划触,触及两耳后腺之间的凹陷处即是枕骨大孔的位置。将毁髓针由凹陷处垂直刺入枕骨大孔,然后针尖向前刺入颅腔,在颅腔内搅动,以毁脑组织。再将毁髓针退至枕骨大孔,针尖转向后方,与脊柱平行刺入椎管,以捣毁脊髓。脊髓彻底捣毁时,可看到蟾蜍后肢突然蹬直,然后瘫软,此时的动物为双毁髓动物。2、剥制后肢标本:左手持手

3、术镊提起两前肢之间背部的皮肤,右手持手术剪横向剪断皮肤,然后往后肢方向撕剥皮肤。剪开腹壁肌肉,用手术镊提起内脏,翻向头部,在看清支配后肢的脊神经发出部位后,于其前方剪断脊柱。3、分离两后肢:将去皮的后肢腹面向上置于解剖盘上,右手持金冠剪纵向剪开脊柱,再剪开耻骨联合,使两后肢完全分离。4、分离坐骨神经:将一侧后肢的脊柱端腹面向上,用玻璃分针沿脊神经向后分离坐骨神经,股部沿腓肠肌正前方的股二头肌和半膜肌之间的裂缝,找出坐骨神经,剪断盖在上方的梨状肌,完全暴露坐骨神经,剪去支配腓肠肌之外的分支,再剪去脊柱及肌肉,只保留坐骨神经发出部位的一小块脊柱骨。5、分离股骨头:沿膝关节剪去股骨周围的肌肉,

4、保留股骨的后2/3,剪断股骨。6、游离腓肠肌:在腓肠肌跟腱下穿线并结扎,提起结扎线,剪断肌腱与胫腓骨的联系,游离腓肠肌,剪去膝关节下部的后肢,保留腓肠肌与股骨的联系,制备出完整的坐骨神经-腓肠肌标本。标本应包括:坐骨神经、腓肠肌、股骨头和一段脊柱骨四部分。7、检验标本:用任氏液沾湿的锌铜弓的两极接触神经,如腓肠肌发生收缩,则标本机能正常,把标本固定在肌槽上。8、连接好装置,调节适宜的灵敏度及刺激强度,开动记录仪,走纸速度为10mm/s,用手控触发开关,以单脉冲刺激神经,记录肌肉的单收缩曲线。9、分别用1Hz、2Hz、3Hz、4Hz、6Hz、12Hz、24Hz、30Hz等频率去刺激坐骨神经

5、,记录肌肉的收缩曲线。【结果与讨论】(1)刺激强度和肌肉收缩的关系。神经细胞的兴奋是因为膜内外的NA+和K+离子浓度变化引起的,膜上存在着许多的NA+和K+离子通道,它们都有电压门控系统控制离子通道的开与闭。在刺激的强度很小的时候,由于不足以使得电压门控通道开放,故无法引起神经细胞兴奋,只有在强度足够大的时候,神经细胞才会兴奋并传导至肌肉。细胞膜上的NA+和K+离子通道是有限的,给予一个最适刺激强度,NA+和K+离子通道将全部开放,神经达到最大兴奋性。若给予神经细胞更大的刺激强度,因为离子通道的限制,神经细胞也不可能出现更大的兴奋性。本次试验在给与神经细胞0.060V的电压刺激时,神经刚

6、好发生兴奋,此为蛙坐骨神经的阈电位;当刺激电压为0.080V时,蛙腓肠肌收缩达到最大限度,这为蛙坐骨神经的最适刺激电位。(2)刺激频率与肌肉收缩的关系。蛙腓肠肌在收缩时,肌细胞会相继出现绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期,若在相对不应期或者超常期早期给予细胞另外一个刺激,肌细胞的第一次兴奋正处于舒张期,而新的刺激会使得肌肉发生收缩,这样肌肉会出现持续收缩的状态,称之为不完全强直收缩;但若在肌细胞兴奋地低常期或者超常期后期给予一个新的刺激,肌细胞此时正处于收缩状态,新的刺激也会使得细胞收缩,两次收缩效果相叠加,肌肉处于持续最大收缩状态,此称之为完全强直收缩。蛙的腓肠肌细胞不完全收缩刺激

7、频率为5Hz至13Hz,完全强直收缩刺激频率大于13Hz。(3)神经干兴奋传到速度的测定。神经干复合电位的传导速度受到多种因素的影响,首先是神经纤维的粗细,其次是纤维本身的性质,还有就是实验中处理的正确与好坏。在剥离神经纤维时,剥离不彻底,有损伤,或者剥离不干净及碰触金属物体都会影响神经纤维的传导速度【注意事项】(1)双毁髓时应注意使蟾蜍头部前俯,防止耳后腺分泌物射入实验者眼内,如被射入,应立即用生理盐水冲洗眼睛。(2)标本制备过程

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