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1、关于染色质免疫共沉淀Chip实验原理及实验总结ChIP实验原理在活细胞状态下固定蛋白质一DNA复合物,并将其随机切断为一定长度范围内的染色质小片段,然后通过免疫学方法沉淀此复合体,特异性地富集冃的蛋白结合的DNA片段,通过对冃的片断的纯化与检测,从而获得蛋白质与DNA相互作用的信息。可以利用ChIP研究转录因子(transcriptionfactor,TF)与启动子(promoter)的关联性。由于ChIP采用甲醛固定活细胞或者组织的方法,所以能比较真实的反映细胞内TF与Promoter的结合情况。这个优势是EMSA这个体外研究核酸与蛋白相互
2、结合的实验方法所不能比拟的。当用甲醛处理时,相互靠近的蛋口与蛋口,蛋白与核酸(DNA或RNA)之间会产生共价键。细胞内,当TFPromoter相互结合(生物意义上的结合)时,它们必然靠的比较近,或者契合在-•起,这个吋候用甲醛处理,能使它们之间产生共价键。一•般ChIP的流程是:甲醛处理细胞——收集细胞,超声破碎——加入目的蛋口的抗体,与靶蛋A-DNA复合物相互结合——加入ProteinA,结合抗体■靶蛋A-DNA复合物,并沉淀——对沉淀下來的复合物进行清洗,除去一些非特异性结合——洗脱,得到富集的靶蛋A-DNA复合物——斛•交联,纯化富集的
3、DNA■片断——PCR分析。ChIP实验步骤第一天:(一)、细胞的甲醛交联与超声破碎。1、取出1平1111细胞(10cm平皿),加入243U137%甲醛,使得甲醛的终浓度为1%。(培养基共有9ml)2、37摄氏度孵育lOmino3、终止交联:加LT氨酸至终浓度为0.125Mo450ul2.5M甘氨酸于平皿中。混匀后,在室温下放置5min即可。4、吸尽培养基,用冰冷的PBS清洗细胞2次。5、细胞刮刀收集细胞于15ml离心管中(PBS依次为5ml,3ml和3ml)。预冷后2000rpm5min收集细胞。6、倒去上清。按照细胞量,加入SDSLysi
4、sBuffer。使得细胞终浓度为每200ul含2x106个细胞。这样每100ul溶液含1x106个细胞。再加入蛋白酶抑制剂复合物。假设MCF7长满板为5x106个细胞。本次细胞长得约为80%。即为4“06个细胞。因此每管加入400ulSDSLysisBuffer。将2管混在一起,共800ulo7、超声破碎:VCX750,25%功率,4.5S冲击,9S间隙。共14次。当然,如果实验室有Bioruptor这种神器的话那就轻松了。(二)、除杂及抗体哺育。8、超声破碎结束后,10,000g4度离心lOmino去除不溶物质。留収300ul做实验,英余保
5、存于一80度。300ul中,100ul加抗体做为实验组;100ul不加抗体做为对照组;100ul加入4ul5MNaCl(NaCl终浓度为0.2M),65度处理3h解交联,跑电泳,检测超声破碎的效果。9、在100ul的超声破碎产物中,加入900ulChIPDilutionBuffer和20ul的50xPIC。再各加入60ulProteinAAgarosc/SalmonSpennDNA。4度颠转混匀lh。10>lh后,在4度静置lOmin沉淀,700rpm离心1min。11、取上清。各留取20ul做为inputo一管中加入lul抗体,另一管中则不
6、加抗体°4度颠转过夜。(三)、检验超声破碎的效果。取100ul超声破碎后产物,加入4ul5MNaCl,65度处理2h解交联。分出一半用酚/氯仿抽提。电泳检测超声效果。第二天:(一)、免疫复合物的沉淀及清洗。12>孵育过夜后,每管中加入60ulProteinAAgarose/SalmonSpermDNA。4度颠转2h。13、4度静HlOmin后,700rpm离心1min。除去上清。14、依次用下列溶液清洗沉淀复合物。清洗的步骤:加入溶液,在4度颠转lOmin,4度静置lOmin沉淀,700rpm离心lmin,除去上清。洗涤溶液:a.lowsal
7、twashbuffer——onewashb.highsaltwashbufferonewashc.LiCIwashbufferonewashd.TEbuffertwowash15、清洗完毕后,开始洗脱。洗脱液的配方:100ull0%SDS,100ullMNaHCO3,SOOulddH20,共1ml。每管加入250ul洗脱buffer,室温下颠转15min,静置离心后,收集上清。重复洗涤-•次。最终的洗脱液为每管500ulo16、解交联:每管屮加入20ul5MNaCl(NaCl终浓度为0.2M)。混匀,65度解交联过夜。笫三天:(一)、DNA样
8、品的回收17、解交联结束后,每管加入lulRNaseA(MBI),37度孵育lh。18、每管加入10ul0.5MEDTA,20ullMTris.HCl(PH6.5)