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时间:2018-11-24
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1、-实验四家兔动脉血压的神经、体液调节【目的要求】1、学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法.2、观察神经,体液因素对心血管活动的影响.【基本原理】在生理情况下,人和其它哺乳动物的血压处于相对稳定状态,这种相对稳定是通过神经和体液因素的调节而实现的,其中以颈动脉窦-主动脉弓压力感受性反射尤为重要。此反射既可在血压升高时降压,又可在血压降低时升压,反射的传入神经为主动脉神经与窦神经。家兔的主动脉神经为独立的一条神经,也称减压神经,易于分离和观察其作用。在人、犬等动物,主动脉神经与迷走神经混为一条,不能分离。反射的传出神经为心交感神经、
2、心迷走神经和交感缩血管纤维,心交感神经兴奋,其末梢释放去甲肾上腺素,去甲肾上腺素与心肌细胞膜上的b受体结合,引起心脏正性的变时变力变传导作用,心迷走神经兴奋,其末梢释放乙酰胆碱,乙酰胆碱与心肌细胞膜上的M受体结合,引起心脏负性的变时变力变传导作用,交感缩血管纤维兴奋时释放去甲肾上腺素,后者与血管平滑肌细胞的a-受体结合引起阻力血管的收缩。本实验应用液压传递系统直接测定动脉血压。即由动脉插管、测压管道及压力换能器相互连通,其内充满抗凝液体,构成液压传递系统。将动脉套管插入动脉内,动脉内的压力及其变化,可通过密闭的液压传递系统传递压力,通过
3、压力换能器将压力变化转换为电信号,用微机生物信号采集处理系统记录动脉血压变化曲线。【预习要求】1.仪器设备知识:RM6240微机生物信号采集处理系统的使用方法。2.实验理论实验动物知识参见第三章第一节生理科学实验常用实验动物的种类;第四章第一节动物实验的基本操作、第四节实验动物手术;统计学知识参见第5章第四节常用统计指标和方法;生理学教材有关动脉血压的调节。检索全文数据库中的相关研究论文,检索方法参见第五章第五节。3.预绘制实验原始数据记录表格和统计表格。【材料】家兔,动脉插管,血压换能器,生物信号采集处理系统,200g/L氨基甲酸乙酯
4、,1000U/ml的肝素,0.1g/L去甲肾上腺素,10-2g/L乙酰胆碱。-【动物与器械】家兔、麻醉箱,兔手术台,常用手术器械,止血钳(4把)、眼科镊、支架、双凹夹、压力传感器,保护电极,气管插管,动脉插管、动脉夹、三通管、注射器(1ml、5ml、20ml),乳胶管,20%~25%氨基甲酸乙酯、肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),乙酰胆碱(1:10000),纱布、棉球、生理盐水,生物机能实验系统.【方法与步骤】1.实验系统连接及参数设置(1)颈动脉血压测量记录装置。将血压换能器固定于铁支柱上,其位置应与心脏在同一平面。(
5、2)压力换能器输出线接微机生物信号处理系统第4通道(亦可选择其它通道)。(3)微机生物信号处理系统参数设置:RM6240系统:点击“实验”菜单,选择“循环”或“自定义实验项目”菜单中的“兔动脉血压调节”。系统进入该实验信号记录状态。仪器参数:4通道时间常数为直流,滤波频率100Hz,灵敏度12Kpa,采样频率800Hz,扫描速度500ms/div。连续单刺激方式,刺激强度5~10V,刺激波宽2ms,刺激频率30Hz。2、实验仪器的准备打开计算机采集系统,接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“家兔血压的调节”实验。3、连通液导系统
6、并制压4、动物准备(1)麻醉:家兔称重,由耳缘缓慢注射20%氨基甲酸乙脂5ml/kg。(2)固定:将家兔背位固定在手术台上,用剪毛剪将颈部和剑突部的被毛剪去即可手术。-(3)手术:沿颈部正中线作一长5-7厘米的皮肤切口,用止血钳分离皮下结缔组织,再向下分离气管和血管神经束.颈部神经与颈总动脉位于气管外侧,用止血钳先将血管神经束腹面的肌肉和结缔组织分离,再用左手拇指和食指轻轻捏住分离的肌肉和皮肤,稍向外翻,即可将血管神经束翻于食指之上,然后用弯头止血钳分离颈动脉约4厘米,穿线备用.(注意:再分离颈总动脉及穿线时,切勿损伤与其伴行的神经;在
7、颈总动脉近甲状腺处有甲状腺前动脉,分离时应稍靠其下,以免损伤)用同样方法分离另一侧颈总动脉,穿线备用.轻轻提起右侧颈总动脉下的备用线,即可清楚看到3条粗细不同的神经,迷走神经最粗,白色,一般位于外侧,易识别;交感神经较细,略显灰色,一般位于内侧;减压神经最细,常与交感神经贴在一起.识别准确后,用玻璃分针纵向小分离.顺序由细到粗,神经分离2厘米,即可穿线备用。(4)气管插管法:用止血钳由颈部正中线将肌肉结缔组织分离,暴露出气管.在气管下方用镊子穿一线,打一活结,在喉头下2-3厘米处的气管上作一“T”形切口,将气管插管向心方向插入气管中并用
8、线结扎,并将多余的线系在气管插管的分叉处固定,以免滑脱。(5)动脉插管法:在分离出来后右侧颈动脉的远心端(尽量靠近头端)用棉线将动脉结扎,在颈总动脉近心端用动脉夹将动脉夹住.与两者之间另穿一线,打一活结备用
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