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时间:2018-11-04
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1、复方苦参注射液对PC-3细胞凋亡的影响目的:研究复方苦参注射液对人前列腺癌PC-3细胞凋亡的影响。方法:用复方苦参注射液对体外培养的人前列腺癌PC-3细胞进行药物处理,采用MTT比色分析法测定复方苦参注射液不同剂量组对PC-3细胞生长的调控作用;采用流式细胞仪分析复方苦参注射液对PC-3细胞周期分布的影响。结果:复方苦参注射液可抑制PC-3细胞的增殖,诱导其凋亡,改变细胞周期分布,使G0/G1期PC-3细胞比例增高。结论:复方苦参注射液可诱导人前列腺癌PC-3细胞凋亡,改变细胞周期分布,从而抑制细胞增殖。
2、 关键词]复方苦参注射液;PC-3细胞系;流式细胞术 中图分类号]R962文献标识码]A1673-7210(2008)10(a)-028-02 近年来,随着工业的发展,环境污染日益加重,肿瘤的发病率日益增高,手术治疗是早期肿瘤治疗的主要方法,但大多数患者就诊时即为晚期,失去了手术治疗的最佳时机,对于不能手术切除病灶的中晚期患者,尤其对于老年肿瘤患者,化疗的不良反应严重,难以耐受。现在,中药抗癌作用受到越来越广泛的关注,本研究旨在通过实验研究,探讨复方苦参注射液对人前列腺癌PC-3细胞凋亡的影响。
3、 1材料和方法 1.1试剂和仪器 人前列腺癌细胞PC-3(购自上海麦莎生物公司),复方苦参注射液(购自山西振东制药有限公司),羊抗鼠FITC-IgG抗体(美国Sigma公司)。冷冻离心机,CO2培养箱,流式细胞仪。 1.2方法 1.2.1PC-3细胞的培养将购买的细胞培养于RPMI-1640培养基中(其中添加10%小牛血清,100U/mL青霉素和100g/mL链霉素),细胞传代使用0.125%胰蛋白酶消化,每2天换1次培养液。当细胞培养至一定规模时,用胰蛋白酶消化获得细胞,用PBS多次洗涤,分别
4、以每孔2104个将细胞接种到96孔板中,以每孔1.5105个接种到24孔板,细胞接种后继续培养24h,然后用于不同的实验。 1.2.2PC-3细胞增殖抑制检测(MTT)细胞接种至96孔板24h后加入复方苦参注射液使其浓度分别为300、150、75、35、18.75μl/ml,设不加复方苦参注射液的阴性对照和不接种细胞的空白对照。37℃下置于CO2培养24、48、72h,每个浓度每个时点接种3孔。每24小时换液,于终止前4h,每孔加入5%MTT,继续孵育4h后弃上清液,每孔加二甲基亚砜100μ
5、l,于490nm波长处在荧光酶联分析仪上测光吸收值(A值),求平均值,计算抑制率。抑制率=(1-实验组平均A值/对照组平均A值)100%。 1.2.3流式细胞术细胞接种24孔板培养24h后换液,实验组加入复方苦参注射液使其终浓度分别为300、75、18.75μl/ml,设不加药对照组(0μl/ml)。每24小时换液,孵育48h后收获细胞,吹冲成细胞悬液,PBS洗涤,1200r/min离心5min,弃上清,加入PBS制成细胞悬液(细胞计数>105个/ml),加入70%冷乙醇固定。4℃下置于PI
6、染液暗室孵育30min,流式细胞仪检测DNA二倍体。 1.2.4统计学方法应用SPSS10.0软件,采用方差分析及SNK两两间检测。 2结果 2.1复方苦参注射液对PC-3细胞增殖的抑制作用 不同浓度处理组分别培养24、48、72h,MTT法测定细胞生长情况,计算抑制率。复方苦参注射液对PC-3细胞增殖具有抑制作用,其作用具有时间和剂量依赖性,差异有显著性(P<0.05)。48h抑制最为显著,72h抑制率下降,见表1。 2.2复方苦参注射液对PC-3细胞凋亡的影响 流式细胞仪检测细胞
7、凋亡。每个样品计数1105个细胞,不同浓度处理组均可见一DI(DNA指数)<0.19的亚二倍体峰,经MultiCycle软件分析,确认为凋亡峰,其面积随药物浓度增加而增加,且差异极具显著性(P<0.01)。复方苦参注射液浓度为300、75、18.75、0μl/ml时诱导细胞的48h后的凋亡率分别为(20.63±1.15)%、(14.26±1.19)%、(10.73±1.11)%、(2.07±1.03)%。 2.3复方苦参注射液对PC-3细胞周
8、期影响 流式细胞仪检测不同浓度处理组的细胞周期分布,复方苦参注射液诱导PC-3细胞G0/G1期细胞比例增高,S期、M期细胞比例降低,其作用具有剂量依赖性,且差异具有显著性(P<0.01),见表2。 3讨论 肿瘤发生的基础是细胞生长和凋亡失调,由于细胞紊乱,从而导致肿瘤的发生。复方苦参注射液依据中医扶正祛邪原则组方,由苦参、冬虫夏草等多味中草药提取而成,临床主要用于抗肿瘤、缓解癌疼痛等1,2]。研究表明,复方苦参
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